检测辛硫磷的酶联免疫试剂盒及其应用
【技术领域】
[0001] 本发明涉及酶联免疫检测技术,具体涉及一种用于检测辛硫磯的酶联免疫试剂 盒,其适用于饲料(原料、配合料、浓缩料)中辛硫磯测定。 技术背景
[0002] 辛硫磯又称巧硫磯、倍腊松、腊巧磯.易与±壤中有机质结合.适合于防治地下害 虫.对危害农作物、果树、蔬菜、桑、茶等作物的多种鱗翅目害虫的幼虫有良好的防治效果. 对虫卵也有一定的杀伤作用。目前.辛硫磯作为高效、广普、低毒的杀虫剂.被认为是甲胺 磯、乐果等高毒农药的替代品.在当前应用较广.我国对辛硫磯的检测限量标准有GB 14858 1994。为评价辛硫磯施用后的环境行为有必要研究辛硫磯在玉米深加工产品如蛋白 粉、蛋白饲料中的残留检测方法。
【发明内容】
[0003] 本发明的目的在于提供一种用于辛硫磯含量测定的酶联免疫试剂盒,其操作简 单,适合现场大批量样品的筛选。
[0004] 本发明试剂盒,它包括: (1) 包被有辛硫磯偶联抗原的酶标板; (2) 辛硫磯标准品溶液; (3) 浓缩酶结合物; (4) 酶结合物稀释液; (5) 底物显色液; (6) 终止液。
[0005] 所述辛硫磯偶联抗原为辛硫磯半抗原与载体蛋白的偶联物,所述载体蛋白可为卵 清蛋白、牛血清白蛋白、血藍蛋白、甲状腺蛋白、鼠血清蛋白、人血清蛋白。
[0006] 所述辛硫磯半抗原制备过程: 1)取20mg辛硫磯,lOul,1,3-丙二胺,催化量的4-二甲氨基化巧溶解于2ml N,Ν'-二甲基甲醜胺中,得到I液; 2) 取20mg Ν,Ν' -二环己基碳二亚胺溶解于0. 5mlDMF中,得到II液; 3) 在0°C条件下,将II液缓慢滴加至I液中,恢复室温后,继续反应20 h ; 4)蒸除溶剂,柱层析(洗脱液二氯甲焼/甲醇,体积比20 ;1),得到辛硫磯半抗原。
[0007] 所述浓缩酶结合物为酶标记的辛硫磯单克隆抗体,所述标记酶为辣根过氧化物 酶;酶结合物是采用过贿酸钢法将标记酶与抗体进行偶联得到的。
[0008] 为了更方便现场监控和大量样本筛查,所述试剂盒还包括辛硫磯标准品溶液、酶 结合物稀释液、底物显色液、终止液。
[0009] 所述的终止液为广2mol/L的硫酸或盐酸溶液,所述底物显色液由底物液A液和底 物液B液组成,底物液A液为过氧化脈溶液,底物液B液为四甲基联苯胺溶液。
[0010] 所述的酶结合物稀释液为PH7. 2~7. 4,0. 5%~1%牛血清白蛋白,0.1mol/L的磯酸盐 缓冲液,所述百分比为重量百分比。
[0011] 其中酶标板在制各过程中所用的包被缓冲液为PH9. 6,0.1mol/L碳酸盐缓冲液, 所用封闭液为PH7. 2~7. 4,0. 5%~1%牛血清白蛋白,0.1mol/L磯酸盐缓冲液,所述百分 比为重量百分比。
[0012] 本发明中酶标板的制备过程为:用包被缓冲液将包被原稀释成0.广0.化g/ml,每 孔加入100 ul,37°C温育化或4°C过夜,倾去包被液,用洗涂液洗涂2次,每次30s,拍干,然 后在每孔中加入150~200ul封闭液,37°C温育广化,倾去孔内液体拍干,干燥后用铅膜真空 密封保存。
[0013] 本发明的检测原理为: 当在微孔条上预包被辛硫磯偶联抗原,加入样本溶液或标准品溶液后,样本中残留的 辛硫磯与酶标板上预包被的辛硫磯偶联抗原竞争辛硫磯的酶结合物,用底物显色液显色, 样本吸光值与所含辛硫磯的含量呈负相关,与标准曲线比较即可得出样本中辛硫磯的含 量。同时根据酶标板上颜色的深浅,与系列浓度的辛硫磯标准品溶液颜色的比较可粗略判 断样品中辛硫磯的浓度范围。
[0014] 本发明还提供了一种应用上述酶联免疫试剂盒辛硫磯的方法,它包括步骤: (1) 样品前处理; (2) 用试剂盒进行检测; (3) 分析检测结果。
[0015] 本发明检测辛硫磯的酶联免疫试剂盒主要采用竞争化ISA方法检测样品中辛硫 磯的含量;对样品的前处理要求低,样品前处理过程简单,能同时快速检测大批量样品,主 要试剂W工作液的形式提供,检验方法方便易行,具有特异性高、灵敏度高、准确度高、精确 度高等特点。本发明的酶联免疫试剂盒,携带便利、使用方便、结构简单、检测方法快速、简 便、适于大批量样品筛选。
【附图说明】
[0016] 图1为辛硫磯半抗原结构式。
[0017] 图2为试剂盒的标准曲线图。
【具体实施方式】
[0018] 下面结合具体的实施例来进一步阐述本发明。应理解,送些实施例仅用于说明本 发明,而不用来限制本发明的范阐。
[0019] 实施例1试剂盒组分的制备 1、辛硫磯半抗原制各 1) 取20mg辛硫磯,lOul,1,3-丙二胺,催化量的4-二甲氨基化巧溶解于2mlN,N' -二 甲基甲醜胺中,得到I液; 2) 取20mg N,Ν'-二环己基碳二亚胺溶解于0. 5mlDMF中,得到II液; 3) 在0°C条件下,将II液缓慢滴加至I液中,恢复室温后,继续反应20 h ; 4)蒸除溶剂,柱层析(洗脱液二氯甲焼/甲醇,体积比20 ;1),得到辛硫磯半抗原,如 图1。
[0020] 2、抗原的制备 免疫原制备一辛硫磯半抗原与牛血清白蛋白度SA)偶联得到免疫原。
[0021] 1)取辛硫磯半抗原5. 3mg用0. 5ml DMF溶解,得到I液; 2) 取BSA 30mg用2. 0ml,pH7. 0,0.1mol/L磯酸盐缓冲液溶解,得到II液; 3) 取碳化二业胺(邸C) lOmg用0. 5ml,pH7. 0,0.1mol/L磯酸盐缓冲液溶解,得到III 液: 4) 将I液与II液混合,在揽拌下缓慢滴加入III液,室温反应2小时,4°C透析二天, 每天换液Η次,得到免疫原。
[0022] 包被原制备--辛硫磯半抗原与卵清蛋白(OVA)偶联得到包被原。
[002引 1)取辛硫磯半抗原5. 3mg用0. 5ml DMF溶解,得到I液; 2) 取OVA 18mg用2. 0ml,pH7. 0,0.1mol/L磯酸盐缓冲液溶解,得到II液; 3) 取邸ClOmg用0. 5ml,pH7. 0,0.1mol/L磯酸盐缓冲液溶解,得到III液: 4) 将I液与II液混合,在揽拌下缓慢滴加入ΙΠ 液,室混反应2小时,4°C透析二天,每 天换液Η次,得到包被原。
[0024] 3、辛硫磯单克隆抗体的制备 a.动物免疫 将上述步骤得到的免疫抗原注入到Ba化/c小鼠体内,免疫剂最为150ug/只,使其产生 抗血清。
[0025] b.细胞融合和克隆化 取免疫Bal b/c小鼠脾细胞,按9:1(数最配比)比例与SP2/0骨髓瘤细胞融合筛选得 到稳定分泌髓辛硫磯单克隆抗体的辛硫磯单克隆抗体杂交瘤细胞株。
[0026] C.细胞冻存和复苏 将杂交瘤细胞用冻存液制成1X1 〇9个/ml的细胞悬液,在液氮中长期保存。复苏时 取出冻存管,立即放入37°C水浴中速融,离必去除冻存液后,移入培养瓶内培养。
[0027] d.单克隆抗体的制各与纯化 增量培养法:将杂交瘤细胞置于细胞培养基中,在37Γ条件下进行培养,用辛酸一饱 和硫酸倭法将得到的培养液进行纯化,得到单克隆抗体,-2(TC保存。
[002引 4、酶标板的制备 用包被缓冲液将包被原稀释成0.广0.化g/ml,每孔加入100 U 1,37°C温育化或4°C过 夜,倾去包被液,用洗涂液洗涂2次,每次30s,拍干,然后在每孔中加入1 50-200 U 1封闭 液
,37Γ温育广化,倾去孔内液体拍干,干燥后用铅膜真空密封保存。
[0029] 5、酶标记抗体的制备 将抗体与辣根过氧化物酶(HR巧采用过贿酸钢法进行偶联制备酶标记抗体,酶与抗体 的摩尔浓度比为2 ;1。
[0030] 实施例2检测辛硫磯的酶联免疫试剂盒的组建 组建检测辛硫磯的酶联免疫试剂盒,使其包含下述组分: (1)包被辛硫磯偶联抗原的酶标板; (2) 辛硫磯标准品溶液 6 瓶,浓度分别为 Oug/L、lug/L、3ug/L、9ug/L、27ug/L、81ug/L ; (3) 浓缩酶结合物; (4) 酶结合物稀释液; (5) 底物显色液由底物液A液和底物液B液组成,底物液A液为过氧化脈,底物液B液 为四甲基联苯胺; (6) 终止液为2mol/L硫酸。
[0031] 实施例3样品中辛硫磯的检测 1.样品前处理 用均质器均质饲料样本;称取5. 0g±0. 05g均质后的饲料样小至50ml聚苯己帰离必管 中,加入251111 50%甲醇,用振荡器剧烈振荡5111111,300化^上,室温(20-251:/68-77 了) 离必5min;取500 U 1上清液至2ml聚苯己帰离必管中,加入500 ullO%氯化钢水溶液用 振荡器振荡Imin,混匀;取20 U 1用于分析。
[0032] 2.用试剂盒检测 向包被有辛硫磯偶联抗原的酶标板微孔中加入髓曲霉毒素 A标准品溶液/样品20 U 1,再加入酶结合物工作液100 U 1 (将浓缩酶结合物用酶结合物稀释液按照1 ;20的体积进 行稀释),用盖板膜封板,25°C避光反应lOmin,倒出孔内液体,每孔加入250 U 1去离子水 充分洗涂4-5次,每次间隔10s,用吸水纸拍干,每孔加入底物液A液过氧化脈50 U 1,底物 液B液四甲基联苯胺(TMB)50 U 1,轻轻振荡混匀,25。°C恒温箱避光显色5min,每孔加入 2mol/L终止液硫酸50 U 1,轻轻振荡混匀,用酶标仪波长设定在450nm处,测定每孔吸光度 值伽值)。
[0033] 3.检测结果分析 用所获得的每个浓度的标准品溶液的吸光度平均值度)除W第一个标准品溶液(0标 准)的吸光度值度0)再乘W 100%,得到百分吸光度值。W辛硫磯标准品浓度(Ug/L)的对 数值为X轴,百分吸光度值为Y轴,绘制标准曲线图。用同样的办法计算样品溶液的百分吸 光度值,相对应每一个样品的浓度,则可从标准曲线上读出辛硫磯的含量。
[0034] 实施例4辛硫磯酶联免疫试剂盒灵敏度、精密度和准确度、保存期实验 1.试剂盒灵敏度和剑检测限 按照常规方法测定试剂盒灵敏度试验,试剂盒灵敏度为lug/l,分别对20份空白饲料 (原料、配合料、浓缩料)样本进行检测,从标准曲线上查出对应于各百分吸光率的浓度,W 20份样本辛硫磯浓度的平均值加上3倍标准差表示检测限,结果得该方法对饲料(原料、配 合料、浓缩料)样本检测限为1 0 ug/kg。
[0035] 2.试剂盒准确度和精密度 W重复测定某一浓度样品的检测结果变异系数(CV% )作为精密度评价指标。W回收 率作为准确度评价指标。变异系数CV%计算公式为;CV% =SD/XX100% ;其中SD为标准 偏差,X为测定数据的平均值。回收率计算公式为:回收率(%)=实际测定值/理论值X 100 %。其中理论值为模拟样品的添加浓度。
[0036] 按10ug/kg、20ug/kg、40 ug/kgH个浓度辛硫磯对原料、配合料、浓缩料样品进行 添加回收测定,每个样品做4个平行,用Η批不同试剂进行测定,计算样品的平均回收率及 精密度结果见下表。
[0037] 表1精密度及准确度试验
Wl0、20、40ug/kgH个浓度的辛硫磯对饲料(原料、配合料、浓缩料)样品进行添加, 平均回收率在87. 8%~102. 8%之间;变异系数均小于20%。检测结果的精密度和准确度 均符合相关标准要求。
[003引 3.试剂盒保存期试验 试剂盒保存条件为2^8Γ,经过12个月的测定,试剂盒的最大吸光度值(零标准)、 50 %抑制浓度、辛硫磯添加实际测定值均在正常范围之内。考虑在运输和使用过程中,会有 非正常保存条件出现,将试剂盒在37Γ保存条件下放置7天,进行加速老化实验,结果表明 该试剂盒各项指标完全符合要求。考虑到试剂盒冷冻情况发生,将试剂盒放入-2(TC冰箱冷 冻7天,测定结果也表明试剂盒各项指标完全正常。从W上结果可得出试剂盒在2^8°C可W 保存12个月。
【主权项】
1. 一种检测辛硫磷的酶联免疫检测试剂盒,其特征在于包括有: (1) 包被有辛硫磷偶联抗原的酶标板; (2) 辛硫磷标准品溶液; (3) 浓缩酶结合物; (4) 酶结合物稀释液; (5) 底物显色液; (6) 终止液。2. 如权利要求1所述的试剂盒,其特征在于所述辛硫磷半抗原的制备方法主要 包括如下步骤: 1) 取20mg辛硫磷,10ul,1,3-丙二胺,催化量的4-二甲氨基吡啶溶解于2ml Ν,Ν' -二甲基甲酰胺中,得到I液; 2) 取20mgΝ,Ν' -二环己基碳二亚胺溶解于0. 5mlDMF中,得到II液; 3) 在0°C条件下,将II液缓慢滴加至I液中,恢复室温后,继续反应20h; 4) 蒸除溶剂,柱层析(洗脱液:二氯甲烷/甲醇,体积比20 :1),得到辛硫磷半抗 原。3. 如权利要求1所述的试剂盒,其特征在于所述的浓缩酶结合物为酶标记的辛硫磷单 克隆抗体。4. 如权利要求1所述的试剂盒,其特征在于所述浓缩酶结合物的标记酶为辣根过氧化 物酶;酶结合物是采用过碘酸钠法将酶标记物与抗体偶联得到。5. 如权利要求1所述的试剂盒,其特征在于:所述的终止液为l~2mol/L的硫酸或盐酸 溶液,所述底物显色液由底物液A液和底物液B液组成,底物液A液为过氧化脲溶液, 底物液B液为四甲基联苯胺溶液。6. 如权利要求1所述的试剂盒,其特征在于所用包被缓冲液为PH9. 6,0.lmol/L碳酸盐 缓冲液,所用封闭液为PH7. 2~7. 4,0. 5%~1%牛血清白蛋白,0.lmol/L磷酸盐缓冲液,所述百 分比为重量百分比。7. 如权利要求1所述的试剂盒,其特征在于所述的酶结合物稀释液为PH7. 2~7. 4,含 0. 5%~1%牛血清白蛋白,0.lmol/L的磷酸盐缓冲液,所述百分比为重最百分比。8. 如权利要求1所述的试剂盒,其特征在r所述辛硫磷标准品溶液浓度分别为Oug/L、 lug/L、3ug/L、9ug/L、27ug/L、81ug/L。9. 一种检测样品中辛硫磷含量的方法,主要步骤包括: 1) 将待测样品进行前处理; 2) 用权利要求1一9任意一项所述的酶联免疫试剂盒进行检测; 3) 分析检测结果。
【专利摘要】本发明提供了一种检测辛硫磷的酶联免疫试剂盒,它含有:包被有辛硫磷偶联抗原的酶标板.辛硫磷标准品溶液,浓缩酶结合物,酶结合物工作液,底物显色液,终止液。本发明还公开了一种应用上述酶联免疫试剂盒检测样本中辛硫磷的方法,它包括:首先进行样本前处理,然后用试剂盒进行检测,最后分析检测结果。本发明提供的酶联免疫试剂盒可用于检测饲料(原料、配合料和浓缩料)样本中辛硫磷的残留量,其操作简便、成本低、灵敏度高、能够现场监控且适合大量样本的筛查。
【IPC分类】G01N33/577
【公开号】CN105486870
【申请号】CN201410530724
【发明人】杜道林, 洪霞, 刘静
【申请人】江苏维赛科技生物发展有限公司
【公开日】2016年4月13日
【申请日】2014年10月10日