一株核桃基腐病的拮抗细菌及其应用
一株核桃基腐病的拮抗细菌及其应用
【技术领域】
[0001] 本发明涉及一株拮抗菌菌株，特别涉及一株拮抗核桃基腐病病原菌的枯草芽孢杆 菌及其应用。
【背景技术】
[0002] 核桃（Juglans regia L.)属落叶乔木，是我国重要的经济树种，具有丰富的营养 价值和保健功能，可制取食用油和制作各种食品。核桃作为新疆的第二大果树，栽培面积占 全疆林果总面积的四分之一，核桃产业已成为新疆农民致富增收的重要支柱产业之一。核 桃适生范围广，常被栽植于山区和田园，是重要的用材树种和生态树种。近几年，随着新疆 核桃种植面积逐渐扩大，大面积种植单一品种、管理粗放以及栽培模式等原因，病虫害问题 日益增多，核桃基腐病（Pythium oligandrum Drechsler)的大面积严重发生制约了新疆核 桃产业的健康发展。
[0003] 目前，防治核桃基腐病的方法主要以化学方法为主，通过大田试验筛选出了咪酰 胺等防效较好的药剂。常规的化学药剂在防治核桃基腐病方面，有经济、高效和方便等优 势，但其易环境污染，不利于打造生态健康果园。最近几年通过生防菌株防治果树病害已成 为一种重要的防治手段，目前应用较多的拮抗细菌主要有芽孢杆菌Bacillus SUbtiliS、假 单胞杆菌Pseudomonas spp·、土壤放射杆菌Agrobacterium radiobacter等。然而通过诘 抗菌株防治核桃基腐病的研宄尚未见报道。因此，筛选出抗菌谱广、生防活性高及对环境安 全的新型拮抗细菌，制备成高效的生防菌剂，对该病害的防治具有重要意义。本研宄将从分 离核桃基腐病病原菌过程中得到的细菌与病原菌通过平板对峙培养法筛选出抑制效果较 好的生防细菌，并对其进行种类鉴定，为生防菌株的进一步开发利用奠定基础。
【发明内容】
[0004] 本发明的目的就是为了克服上述现有技术存在的问题，提供一种防治核桃基腐病 的拮抗菌菌株。
[0005] 本发明进一步提供含有上述菌株作为有效菌，可作为生物防治菌剂对核桃基腐病 进行防治。
[0006] 本发明进一步提供利用上述生物防治菌剂的防治方法。
[0007] 本发明人等从新疆和田地区墨玉县采集的核桃基腐病病害标本中分离出一株枯 草芽孢杆菌株，发现该菌株对植物生长无不良影响，具有抑制核桃基腐病病原菌的效果，并 由此完成了本发明。
[0008] 本发明涉及以下的菌株和核桃基腐病生物防治剂，以及核桃基腐病防治方法。
[0009] (1)枯草芽孢杆菌菌株GY-Il。
[0010] (2)核桃基腐病生防剂，其特征在于含有芽孢杆菌菌株GY-Il作为有效菌。
[0011] (3)核桃基腐病防治方法，其特征在于使用上述（2)中记载的核桃基腐病生防剂。
[0012][枯草芽孢杆菌菌株GY-Il的分离与保藏]
[0013] 本发明的枯草芽孢杆菌菌株GY-Il是从新疆和田地区墨玉县采集的核桃基腐病 病害标本中分离出的菌株。
[0014] 具体的，本发明是通过以下步骤得到核桃基腐病拮抗菌菌株GY-Il的：
[0015] 拮抗菌株的分离：将核桃基腐病病害标本材料的病健交界部位切成5mm的组织 块，先用75 %乙醇消毒该组织块30s，立即取出，再置于1 %次氯酸钠消毒90s，最后用无菌 水冲洗3次后，利用灭菌滤纸将组织块表面的水吸干，得到消毒后的组织块。将消毒后的组 织块在PDA培养基上进行培养，28°C恒温培养，每24h观察一次，使用划线法将长出的细菌 菌落纯化在NA平板上，得到单菌落，最后将得到的单菌落于4°C保存。
[0016] 拮抗菌株的筛选：将分离得到的单菌落进行活化培养，在距离病原菌2. Ocm处等 距离地将所述单菌落划线至已接种核桃基腐病病原菌的PDA平板上，以只接病原菌的PDA 平板培养基为对照，每个处理3个重复。28°C恒温培养，待对照的平板培养基的菌丝即将长 满时，测量细菌菌株与病原菌之间的抑菌带宽度，选取得到对核桃基腐病病菌抑菌带最宽 的拮抗菌株GY-Il。
[0017] 其中，所述PDA培养基的配方是去皮土豆200g，葡萄糖17g，琼脂15g，蒸馏水 lOOOmL，pH 自然。
[0018] 其中，所述NA培养基的配方为：蛋白胨10g，牛肉膏5g，NaCl 5g，琼脂15g，蒸馏水 1000mL? pH 7. 2〇
[0019] 该菌株根据其后所述的培养特征和生理生化特征，参考《常见细菌系统鉴定手册》 和《芽孢杆菌属》的描述，结合分子生物学结果确定拮抗菌株GY-Il为枯草芽孢杆菌，于 2015年5月14日作为"枯草芽孢杆菌（Bacillus subtilis)GY-ll"保藏于中国微生物菌 种保藏管理委员会普通微生物中心（简称CGMCC);保藏地址：北京市朝阳区北辰西路1号 院3号，中国科学院微生物研宄所。
[0020] (a)形态学性质
[0021] 形态：杆状
[0022] 单细胞大小：0· 7 ~0· 8 μπιΧ2 ~3 μπι
[0023] 运动性：+
[0024] 鞭毛着生状态：周生
[0025] 芽孢形态：椭圆
[0026] 芽抱大小：0· 6 ~0· 9 X I. 0 ~1. 5 μ m
[0027] (b)培养性质
[0028] 菌落形状：圆形
[0029] 菌落颜色：乳白色
[0030] 液体培养基培养：乳白色，白色边缘不圆滑似圆形，表层不规则突起，褶皱明显。
[0031] (C)生理学性质
[0032] 革兰氏染色：+
[0033] 接触酶试验：+
[0034] VP 实验：+
[0035] 甲基红试验：+
[0036] 淀粉水解：+
[0037] 柠檬酸的利用：+
[0038] 卵磷脂试验：-
[0039] 菌膜形成试验：+
[0040] 吲哚物质的生成：-[0041] 好氧兼性厌氧测定：_
[0042] 硫化氢的产生：_
[0043] 硝酸盐的还原：_
[0044] 2% NaCl ：++
[0045] 5 % NaCl ：++++
[0046] 7% NaCl ：++++
[0047] 10% NaCl ：++
[0048] 需要说明的是，" + "代表阳性，代表阴性，"++"代表生长一般，"++++"代表生 长最适。
[0049] (d)化学分类学性质
[0050] 菌株GY-11与枯草芽抱杆菌Bacillus subtilis的16SrDNA序列同源性为99%， 在GenBank注册的序列号为KP876486。从基于邻接法构建的16SrDNA系统发育树（如图 4所不）可以发现；菌株GY-Il与模式菌株枯草芽孢杆菌（KF496886)聚类在同一大分支内 (支持率99% )，并结合菌株的形态学及生理生化特征，最终确定菌株GY-Il为枯草芽孢杆 菌 Bacillus subtilis。
[0051] [GY-11菌株的培养]
[0052] 有关本发明的GY-Il菌株的培养方法可以选择任何适宜的培养基和培养条件。此 外，除液体培养基之外可以使用加入了琼脂的斜面培养基和平板培养基等固体培养基。通 过培养使GY-Il菌株增殖以获得所需的菌体量。
[0053] 培养基中的碳源可以利用所述GY-Il菌株可以同化的所有物质。具体地说，除葡 萄糖、半乳糖、D-土塘、蔗糖、麦芽糖、麦芽提取物、淀粉水解物等糖之外，还有GY-Il可以利 用的各种合成或天然碳源，但是不包括乙酸。
[0054] 培养基中的氮源，同样的，除含有有机氮的蛋白胨、酵母提取物、硫酸铵、谷氨酸、 酵母膏、磷酸二氢铵、硝酸钾、氯化铵、硝酸钙、天冬氨酸、亚硝酸钠之外，还可以是GY-Il菌 株可以利用的各种合成或天然氮源，但是不包括尿素。
[0055] 根据常规的微生物培养方法，必要时可以相应地添加 NaCl、磷酸盐等无机盐类、 钙、镁、铁等金属盐，维生素、氨基酸等微量营养源。
[0056] 培养可以在摇床培养、震荡培养、通气培养等好氧条件下进行。培养温度为20~ 40°C，优选25~30°C，进一步优选为25°C ;pH5~9,优选6~7,进一步优选为7 ;培养时间 24-48h，优选24h为宜，其中，摇床培养的转速为120-220r/min，优选160-200r/min，进一步 优选为180r/min。
[0057] [GY-11菌株的应用]
[0058] 对于本发明的枯草芽孢杆菌GY-11，使其培养物（含有菌体）或其处理产物（培 养物和其他成分混合物等）、或培养分离的菌体（培养物经离心分离所得的菌体或其他成 分的混合物等）及其处理产物（培养分离的菌体和其它成分的混合物等），以及有这些处理 产物（这些的经液体或固体稀释的稀释物）存在于根、茎、叶、种子等植物体上，或存在于栽 培土壤中，具有抑制核桃基腐病病原菌的性质。
[0059] 本发明的核桃基腐病生防剂是含有GY-Il菌株为有效菌的生防剂。在本发明的生 防剂可以使用GY-Il菌株，也可以将GY-Il菌株和其变异体一起使用。变异体是具有上述 GY-Il菌株的细菌学性质、具有核桃基腐病防治作用的物质，可以利用自然突变株、用紫外 线或化学诱变剂所得的突变株、或细胞融合株以及基因重组株。本发明中，在核桃基腐病生 防剂中所含的GY-Il菌株包括GY-Il菌株的变异体。
[0060] 本说明书 中所述的防治不仅指对病的预防、抵制，也用于表示包含有去除、杀死的 效果。因此，对于已感染了病原菌的植物，应用本发明的植物病害生防剂可从植物中去除病 原菌，也可以预防由病原菌引起的病害或病害的恶化。
[0061] 此外，本发明的核桃基腐病生防剂中的GY-Il菌株除单独以菌体或培养物使用 外，还可以作为用非活性的液体或固体载体稀释，必要时添加表面活性剂、其他助剂的药剂 使用。具体的制剂例，例如粒剂、粉剂、水和剂、悬浊剂、乳剂等剂型。优选地载体，例如滑 石、皂土、粘土、高岭土、硅藻土、白碳、蛭石、消石灰、硅砂、硫酸铵、尿素、多孔固体载体、水、 异丙醇、二甲苯、环已酮、甲基萘、烷基二醇等以载体等。作为表面活性剂和分散剂，例如二 萘基甲磺酸盐、乙醇硫酸酯盐、烷基芳基磺酸盐、木质素磺酸盐、聚氧乙烯二醇醚、聚氧乙烯 烷基芳基醚、聚氧乙烯脱水山梨糖醇单烷基化合物等。作为助剂，例如羧甲基纤维素、聚乙 二醇、丙二醇、阿拉伯胶、黄原胶等。作为保护剂，例如脱脂牛奶、PH缓冲剂等。此时，GY-Il 菌株活菌体的量和/或培养物的量、以及施用时期和适用量可根据上述应用活菌体的情况 适宜的确定。
[0062] 本发明提供的生防剂可以直接施用，也可以用水等稀释后施用。所述生防剂的施 用方法没有特别的限定，例如，直接向植物撒播的方法、添加到向植物中添加的水或肥料中 的方法等。此外，制剂的施用量优选根据施用方法、发生倾向、受害程度、环境条件、使用剂 型等的不同作适当的调整。
[0063][有益效果]
[0064] 本发明利用新疆和田地区墨玉县采集得的核桃基腐病病害标本中分离出一种枯 草芽孢杆菌株GY-Il对核桃基腐病病原菌具有高效的抑制作用，并且该菌株对温度、pH值 等自然环境条件的适应范围广，能使核桃基腐病病原菌正常的菌丝发生断裂、解体，从而抑 制菌丝的生长，其抑制率均在80%以上。
【附图说明】
[0065] 图1是本发明的核桃基腐病诘抗菌株Bacillus subtilis GY-Il在不同时间段的 生长曲线；
[0066] 图2本发明的核桃基腐病拮抗菌株Bacillus subtilis GY-Il的革兰氏染色后的 菌体形态图
[0067] 图3是本发明的核桃基腐病拮抗菌株Bacillus subtilis GY-Il的菌落形态图；
[0068] 图4是基于16S rDNA对菌株GY-Il的系统发育树；
[0069] 图5表示不同装液量对菌株GY-Il发酵的影响；
[0070] 图6表示不同接种量对菌株GY-Il发酵的影响；
[0071] 图7表示不同初始pH值对菌株GY-Il发酵的影响；
[0072] 图8表示不同温度对菌株GY-Il发酵的影响；
[0073] 图9表示不同转速对菌株GY-Il发酵的影响。
【具体实施方式】
[0074] 下面结合具体实施例来进一步描述本发明，本发明的优点和特点将会随着描述而 更为清楚。但这些实施例仅是范例性的，并不对本发明的范围构成任何限制。本领域技术 人员应该理解的是，在不偏离本发明的精神和范围下可以对本发明技术方案的细节和形式 进行修改或替换，但这些修改和替换均落入本发明的保护范围内。
[0075] 需要说明的是，本发明使用的培养基如下：
[0076] 碳源测定时用碳源基础培养基成分：每1000 mL含有（NH4) 2S042. 0g，NaH2PO4 · H2O 0.5g，K2HP0 40.5g，MgS04.7H20 0.2g，CaCl2.2H20 0.18，口!17.0-7.2，分别加入0.5%~1% 的葡萄糖、蔗糖、果糖、乳糖、麦芽糖、D-木糖、淀粉、乙醇丙三醇、甘露醇、山梨酸、乙酸和柠 檬酸，或〇. 1 %~0.2%的葡萄糖、蔗糖、果糖、乳糖、麦芽糖、D-木糖、淀粉、乙醇丙三醇、甘 露醇、山梨酸、乙酸和柠檬酸，作为碳源。
[0077] 氮源测定时用氮源基础培养基成分：每1000 mL含有Na2HP042. 16g，KH2PO4L 36g， MgSO4 ·7Η20 0· 2g，FeS040. 5g，CaCl25. 00g，葡萄糖 10g，pH7. 0-7. 2,分别加入0· 05%~0· 1% 的蛋白胨、酵母膏、硫酸铵、硝酸钙、磷酸二氢铵、亚硝酸钠、尿素、谷氨酸、天冬氨酸、硝酸 钾、氯化铵作为氮源。
[0078] PDA培养基的配方是去皮土豆200g，葡萄糖17g，琼脂15g，蒸馏水1000mL，pH自 然；NA培养基成分：蛋白胨10g，牛肉膏5g，NaC15g，琼脂15g，蒸馏水lOOOmL，pH 7. 2 ;LB 培养基成分：胰蛋白胨l〇g，酵母提取物5g，NaCl 10g，蒸馏水调节总体积为1000mL，pH 7. 0-7. 2 ;NB培养基成分：蛋白胨10g，牛肉膏3g，NaCl 5g，蒸馏水调节总体积为1000mL， pH 7. 0-7. 2 ;高氏 1 号培养基成分：可溶性淀粉 20g，KNO3Ig, NaCl 0. 5g，K2HPO4O. 5g， MgSO4 · 7H20 0· 5g，FeS04 · 7H20 0· 01g，蒸馏水调节总体积为 1000mL，pH 7· 0-7. 2 ;玉米粉 培养基成分：玉米粉5g，蛋白胨0. lg，葡萄糖lg，蒸馏水调节总体积为1000mL，pH7. 0-7. 2 ; 参考培养基1成分：牛肉膏3g，蛋白胨5g，酵母粉0. 5g，葡萄糖10g，蒸馏水调节总体积为 1000mL，ρΗ7· 0-7. 2。
[0079] 实施例1拮抗菌株的获得
[0080] 供试菌株：核桃基腐病病原菌由新疆农业大学林学与园艺学院病理实验室提供， 采于新疆和田地区墨玉县。
[0081] 1.拮抗菌株的分离
[0082] I. 1病害标本的处理
[0083] 将核桃基腐病病害标本材料的病健交界部位切成5mm的组织块，用75%乙醇消毒 该组织块30s，立即取出并置于1 %次氯酸钠消毒90s，最后用无菌水冲洗3次后利用灭菌滤 纸吸取组织块表面的水分，得到消毒后的组织块。
[0084] 1. 2分离菌株
[0085] 将得到的消毒后的组织块在PDA培养基进行培养，28°C恒温条件下，24h观察一 次，当组织块周围长出抑菌圈时，使用划线法将所述抑菌圈的细菌菌落划线至NA平板培养 基上进行纯化，得到单菌落，最后将得到的单菌落于4°C保存。I. 3拮抗菌株的筛选 [0086] 将核桃基腐病病菌接种于PDA平板上，在28°C下培养3天，用直径5mm的打孔器打 取菌落生长一致的菌块接种于PDA平板中央，将分离得到的细菌划线接于PDA平板中央的 病原菌两侧的2. Ocm处进行培养；以只接病原菌的PDA平板对照平板，28°C恒温培养，当观 察到对照的PDA平板培养基中的菌丝即将长满时，测量接种拮抗菌菌株与病原菌之间的抑 菌带宽度，计算抑制率，选择抑菌带最宽的菌株于4°C保存。
[0087] 其中：
[0088]
[0089] 结果表明：核桃基腐病拮抗菌株Bacillus subtilis GY-Il对核桃基腐病病原菌 的抑制效果很好，抑菌带宽度较宽，抑制率可达80%。
[0090] 2拮抗菌株的生长曲线的绘制
[0091] 挑取抑菌带最宽的菌株的单菌落接种于容量为250mL、含有50mL NB培养基的三 角瓶中，震荡培养24h，其中培养温度为28°C，震荡速率为180r/min，制得种子液。
[0092] 取盛有50mL NB培养液的250mL三角瓶25个，分别编号为0、2、4、6、8、10、12、14、 16、18、20、22、24、26、28、30、32、34、36、38、40、42、44、46、48h，其中每个编号表示不同的培 养时间。向所述编号的25个NB培养基中分别接种2mL的种子液，在温度条件为28°C下进 行振荡培养，以灭菌的NB培养基为对照。
[0093] 分别从对应时间编号的三角瓶取出培养液，测定不同培养时间的菌株0D_值。根 据测得的数值绘制生长曲线。（生长曲线如图1)所示。
[0094] 结果表明：菌株GY-Il在0~4h生长较慢，4~IOh生长最快，菌株呈典型的对数 生长；10~30h的时间段，菌体的生长量变化不大，达到稳定期；在30~48h菌株的生长量 有明显的下降趋势，此后进入衰亡期。
[0095] 3.拮抗菌株的鉴定
[0096] 3. 1菌株的形态学特征
[0097] 将活化后的菌株GY-Il划线接种于NA平板上，28°C培养24h，涂于载玻片上进行负 染，显微镜下观察菌落特征，鉴定方法参阅东秀珠等人编著的《常见细菌系统鉴定手册》（北 京：科学出版社，2001:349-398)。图3为拮抗菌株GY-11革兰氏染色后菌体形态图，测定结 果如下：
[0098] 拮抗菌株GY-Il的菌体为杆状（如图2所示），革兰氏染色呈现紫色，鞭毛特征不 明显，为革兰氏阳性菌，其单菌落为圆形（如图3所示），乳白色，白色边缘不圆滑似圆形，表 层不规则突起，褶皱明显。
[0099] 用接种针分别挑取24h培养的菌株，分别接种于PDA、PSA的液体培养基和NB、LB 培养基，封口，180r/min，28°C下振荡培养24h，测定OD6cJ直，观察菌株的最适培养基。
[0100] 结果表明，菌株在不同培养基上生长存在一定差异，在NA培养基上生长最好，其 次是PDA培养基。
[0101] 3. 2菌株的生理生化特性的测定
[0102] 参照东秀珠等人编著的《常见细菌系统鉴定手册 》（北京：科学出版社， 2001:349-398)和戈登，R.E.等著，蔡妙英译的《芽孢杆菌属》中介绍的方法，观察菌株及菌 落形态，测定拮抗细菌的需氧特征、NaCl耐受度、柠檬酸盐利用、丙二酸盐利用、接触酶、V-P 试验、甲基红试验、明胶液化等生理生化指标测得结果如表1所示。
[0103] 表1菌株GY-Il生理生化特性
[0104]
[0105] 注释：" + "代表阳性，代表阴性，"++"代表生长缓慢，"+++"代表生长一般 "++++"代表生长最适
[0106] 如表1所示，GY-Il菌株的生理生化特性表明：菌株为革兰氏阳性菌，厌氧菌，有 氧条件下生长微弱；最适的生长温度为21°C ;在含有5%或7% NaCl的液体培养基生长良 好，盐度越高，生长缓慢，说明菌株耐盐性一般；菌株过氧化氢试验为阳性反应；可使明胶 液化；有菌膜形成；甲基红试验呈阳性反应；V-P试验为红色，为阳性反应（如表1所示）。 形态学与生理生化特性的鉴定结果表明，菌株GY-Il与芽孢杆菌属的描述一致，因此菌株 GY-Il为枯草芽孢杆菌。
[0107] 3. 3菌株的分子生物学鉴定
[0108] 利用Promega公司的Al 120DNA提取试剂盒提取菌株GY-Il的DNA，提取方法按说 明书中的步骤进行，设计引物I 63f(5'-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3'）和引物II 1387r(5'-A CGGCTACCTTGTTACGACT-3'），对提取得的DNA进行PCR扩增，其中反应体系如表2所示，反应 条件如表3所示：
[0109] 表2 PCR反应体系
[0110]
[0111] 表3 PCR反应条件
[0112]
[0113] 对获得的PCR产物在1%的琼脂糖凝胶电泳成像，并送至北京天根生物有限公司 对PCR产物进行测序，测序结果见序列表SEQ NO. 1，序列经ClustalX 1.83比对、校正和编 辑后，用MEGA5. 0软件中的NJ (Neighbor-Joining，邻接法）法构建系统发育树，应用自展法 (bootstrap)检验系统树，自展数据集为1000次。以Amphibacillus xylanus作为外群。
[0114] 将测序结果在GenBank数据库中进行同源性比对，BLAST结果表明，菌株与枯草 芽孢杆菌Bacillus subtilis的16SrDNA序列同源性为99%，在GenBank注册的序列号为 KP876486。从基于邻接法构建的16SrDNA系统发育树（如图4所示）可以发现；菌株GY-Il 与模式菌株枯草芽孢杆菌（KF496886)聚类在同一大分支内（支持率99%)，说明该菌株与 模式菌株完全相同。
[0115] 根据《常见细菌鉴定手册》，结合菌株的形态学及生理生化特征，最终确定菌株 GY-11 为枯草芽抱杆菌 Bacillus subtilis。
[0116] 本发明的枯草芽抱杆菌Bacillus subtilis GY-11菌株已与2015年5月14日保 藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心（简称CGMCC，北京市朝阳区北辰西 路），中国科学院微生物研宄所；保藏号为CGMCC No. 10809。
[0117] 本发明的枯草芽孢杆菌Bacillus subtilis GY-Il菌株的保藏培养基为常规的NA 培养基，培养温度为28 °C。
[0118] 实施例2菌株的发酵培养
[0119] 1、病原菌的纯化
[0120] 挑取保存于试管中的病原菌菌丝置于PDA平板中央，黑暗条件28°C恒温培养2-3d 后备用。
[0121] 2、菌株GY-Il种子液的制备和发酵的制备
[0122] 将菌株GY-Il通过划线法活化置于NA培养基上，28°C恒温培养24h后，挑取单菌 落接种装置有50mLNB培养基的250mL的三角瓶中，28°C、180r/min摇床培养24h制成种子 液。
[0123] 3、培养基的筛选
[0124] 取ImL菌株GY-Il的种子液分别接种至装有50mL已灭菌的PDA培养液、高氏一号 培养液、玉米粉培养液、参考培养基的250mL的三角瓶中，28°C、180r/min摇床培养24h后， 测定菌株在不同培养液中的〇D_值，测得结果如表4所示。
[0125] 其中，OD6cJ直采用现有技术常用的测定方法，优选为紫外可见分光光度计进行测 定。
[0126] 表4不同培养基对菌株GY-Il的影响
[0127]
[0128] 注：+表示适宜生长，-表示不适宜生长。
[0129] 由表4可知，菌株GY-Il在供试的6种培养基中均能生长，但在不同的培养基中的 生长量存在显著差异，其中，LB培养基为菌株GY-Il最适的培养基，NB次之，玉米粉培养基 中菌体生长量最少。
[0130] 4、菌株对不同碳源和氮源的利用
[0131] 4. 1碳源基础培养基的制备
[0132] 参考《常见细菌系统鉴定手册》中的方法，再利用碳源基础培养基中分别加入不同 的碳源：葡萄糖、鹿糖、果糖、乳糖、麦芽糖、D-木糖、淀粉、乙醇丙三醇、甘露醇、山梨酸、乙 酸和柠檬酸，碳源的最终浓度除糖醇类为〇. 5~1%之外，一般为0. 1%~0. 2%，制得含有 不要同碳源的基础培养基。
[0133] 4. 2氮源基础培养基的制备
[0134] 参考《常见细菌系统鉴定手册》中的方法，再利用氮源培养基中分别加入不同的氮 源：蛋白胨、酵母膏、硫酸铵、硝酸钙、磷酸二氢铵、亚硝酸钠、尿素、谷氨酸、天冬氨酸、硝酸 钾、氯化铵，氮源浓度为0. 05%~0. 1%，制备不同氮源的基础培养基。
[0135] 4. 3 接种
[0136] 菌环挑取活化后的GY-Il置于ImL无菌水中，震荡混匀制备成菌悬液，吸取10 μ 1 菌悬液，分别接种于含不同碳源和不同氮源的基础培养基的5mL试管中，设置不接菌的培 养基为对照，28°C、转速180r/min摇床培养24h，记录菌株在不同碳源和氮源培养基中的 〇D_值，比较菌株GY-Il对不同碳源和氮源的利用情况。测得结果如表5和表6所示。
[0137] 表5不同碳源对拮抗细菌生长量的影响
[0138]
[0139] 注：+表示适宜生长，-表示不适宜生长。
[0140] 由结果可知，菌株GY-Il在以乙酸作为碳源时，菌体生长量为负，表明乙酸不适做 碳源；当葡萄糖最为碳源时，菌体的生长量最大，淀粉、蔗糖和D-木糖次之，山梨醇和乙醇 最低，因此葡萄糖为最佳碳源。
[0141] 表6不同碳源对拮抗细菌生长量的影响
[0142]
[0143] 注：+表示适宜生长，-表示不适宜生长。
[0144] 由表6可知，菌株在以尿素最为氮源时，菌体生长量为负，表面尿素不适合最为氮 源，蛋白胨作为氮源时，生长量最大，硫酸铵、谷氨酸和酵母膏次之，天冬氨酸和亚硝酸钠最 为氮源时生长量最低，可见，蛋白胨为GY-Il的最佳氮源。
[0145] 5装液量的确定
[0146] 分别取30mL、50mL、70mL、90mL、110mL、130mL最适培养基加入250mL的三角瓶中， 接种量为4%、pH为7、温度为28°C、转速为180r/min摇培24h后，测定菌体的生长量和菌 株GY-Il对病原菌的抑制率，每个处理3次重复。
[0147] 测定方法如下：
[0148] 菌体生长量的测定方法为：取菌株GY-Il不同处理的发酵液，在分光光度计上测 600nm菌液的OD值，以OD _值来表示菌体生长量的多少。
[0149] 菌株GY-Il对病原菌的抑制率的测定方法：在位于PDA平板直径三分之一处用直 径为5_的打孔器打孔，去除培养基。将不同处理得到的菌株GY-11的发酵液用0. 22 μ m微 孔滤膜过滤即得无菌滤液，取40uL体积的无菌滤液注入打孔处，以无菌培养基为对照；在 已纯化有病原菌的PDA平板上，打取直径为5mm、菌龄一致的菌饼点接于已注入菌株GY-Il 菌悬液的PDA平板同一直径三分之二处，每个处理3次重复，28°C恒温培养，待对照长满时 参考公式计算生长抑制率。计算结果如图5所示；
[0150] 其中：
[0151]
[0152] 根据图5所示的计算结果，当250mL的三角瓶装液量为50mL时菌体的生物量到达 最大，〇D_值达1. 863,产生的抑菌物质对病原菌的抑制率达到最高，为52. 9%。当装液量 达到70mL时，生物量开始下降，且抑菌活性也降低，说明菌株GY-Il生长对通气量有一定的 要求，装液量过少或过大，都不利于菌株的发酵。因此，250mL的三角瓶装液50mL为最佳装 液量。
[0153] 6、接种量对菌株GY-Il生长量和抑菌效果的影响
[0154] 在确定最优装液量后，分别按照装液量体积的2%、4%、6%、8%、10%接入种子 液，pH为7、28°C、转速为180r/min摇培24h后，测定菌体的生长量和菌株GY-Il对病原菌 的抑制率，每个处理3次重复，测定方法如下：
[0155] 菌体生长量的测定方法为：取菌株GY-Il不同处理的发酵液，在分光光度计上测 600nm菌液的OD值，以OD 600值来表示菌体生长量的多少。
[0156] 菌株GY-Il对病原菌的抑制率的测定方法：在位于PDA平板直径三分之一处用直 径为5_的打孔器打孔，去除培养基。将不同处理得到的菌株GY-1 1的发酵液用0. 22 μ m微 孔滤膜过滤即得无菌滤液，取40uL体积的无菌滤液注入打孔处，以无菌培养基为对照；在 已纯化有病原菌的PDA平板上，打取直径为5mm的菌龄一致的菌饼点接于已注入菌株GY-Il 菌悬液的PDA平板同一直径三分之二处，每个处理3次重复，28°C恒温培养，待对照长满时 参考公式计算生长抑制率。计算结果如图6所示；
[0157] 其中：
[0158]
[0159] 如图6所示的不同接种量对菌株GY-Il发酵的影响，GY-Il在接种量为2% -10% 的范围内均具有抑菌活性，当接种量为6%时，其生物量达到最大，OD6c?达1.903。产生的 抑菌物质对病原菌的抑制率达到最高，为51. 7%。当接种量为80%时，其生物量与抑菌活 性均呈下降趋势，可能由于接种量过大，导致培养基营养成分过度消耗，因此最适接种量为 6% 〇
[0160] 7、pH值对菌株GY-Il生长量和抑菌效果的影响
[0161] 将最适液体培养基的pH分别调至5、6、7、8、9并加入250mL的三角瓶中，在最优 接种量和装液量条件下、28°C、180r/min摇培24h后，测定菌体的生长量和菌株GY-Il对病 原菌的抑制率。
[0162] 测定方法如下：
[0163] 菌体生长量的测定方法为：取菌株GY-Il不同处理的发酵液，在分光光度计上测 600nm菌液的OD值，以OD _值来表示菌体生长量的多少。
[0164] 菌株GY-Il对病原菌的抑制率的测定方法：在位于PDA平板直径三分之一处用直 径为5_的打孔器打孔，去除培养基。将不同处理得到的菌株GY-11的发酵液用0. 22 μ m微 孔滤膜过滤即得无菌滤液，取40uL体积的无菌滤液注入打孔处，以无菌培养基为对照；在 已纯化有病原菌的PDA平板上，打取直径为5mm的菌龄一致的菌饼点接于已注入菌株GY-Il 菌悬液的PDA平板同一直径三分之二处，每个处理3次重复，28°C恒温培养，待对照长满时 参考公式计算生长抑制率。计算结果如图7所示；
[0165] 其中：
[0166]
[0167] 根据图7所示的计算结果，菌株GY-Il对pH的适应范围较宽，在pH为5-9的范围 内，菌株均能生长。其中在pH为7时其生物量最大，OD _达到1.858。产生的抑菌物质对 病原菌的抑制率达到最高，为50. 6%。pH为8时，生物量与抑菌活性均明显下降，说明中性 条件下有利于菌株的生长。因此，最适初始PH为7。
[0168] 8、温度对菌株GY-Il生长量和抑菌效果的影响
[0169] 将最适液体培养基分别放置在20 °C、25 °C、30 °C、35 °C、40 °C的温度下，在最优接种 量、装液量为、pH的条件下，180r/min摇培24h后，测定菌体的生长量和菌株GY-Il对病原 菌的抑制率。
[0170] 测定方法如下：
[0171] 菌体生长量的测定方法为：取菌株GY-Il不同处理的发酵液，在分光光度计上测 600nm菌液的OD值，以OD _值来表示菌体生长量的多少。
[0172] 菌株GY-Il对病原菌的抑制率的测定方法：在位于PDA平板直径三分之一处用直 径为5_的打孔器打孔，去除培养基。将不同处理得到的菌株GY-11的发酵液用0. 22 μ m微 孔滤膜过滤即得无菌滤液，取40uL体积的无菌滤液注入打孔处，以无菌培养基为对照；在 已纯化有病原菌的PDA平板上，打取直径为5mm、菌龄一致的菌饼，点接于已注入菌株GY-Il 菌悬液的PDA平板的同一直径的三分之二处，每个处理3次重复，28°C恒温培养，待对照长 满时参考公式计算生长抑制率。计算结果如图8所示；
[0173] 其中：
[0174]
[0175] 根据图8所示的计算结果，菌株GY-Il在20_40°C范围内均可生长，产生的抑菌物 质对病菌的抑制率均在40%以上。其中在25°C时菌株GY-Il的生物量达到最大值，OD 6c?为 1.895,菌株产生的抑菌物质对病菌的抑制率也达到最高值，为51. 8% (图4)，30°C时生物 量和抑制率开始下降。25°C为最适发酵温度。
[0176] 9、转速对菌株GY-Il生长量和抑菌效果的影响
[0177] 将最适液体培养基分别放置于不同转速下：140r/min、160r/min、180r/min、200r/ min、220r/min，在最优接种量、装液量、pH、温度的条件下培养24h后，测定菌体的生长量和 菌株GY-Il对病原菌的抑制率。
[0178] 测定方法如下：
[0179] 菌体生长量的测定方法为：取菌株GY-Il不同处理的发酵液，在分光光度计上测 波长为600nm处菌液的OD值，以OD _值来表示菌体生长量的多少。
[0180] 菌株GY-Il对病原菌的抑制率的测定方法：在位于PDA平板直径三分之一处用直 径为5_的打孔器打孔，去除培养基。将不同处理得到的菌株GY-11的发酵液用0. 22 μ m微 孔滤膜过滤即得无菌滤液，取40uL体积的无菌滤液注入打孔处，以无菌培养基为对照；在 已纯化有病原菌的PDA平板上，打取直径为5mm的菌龄一致的菌饼点接于已注入菌株GY-Il 菌悬液的PDA平板同一直径三分之二处，每个处理3次重复，28°C恒温培养，待对照长满时 参考公式计算生长抑制率。计算结果如图9所示；
[0181] 其中：
[0182]
[0183] 根据图9的计算结果，摇培的转速对菌体的生物量有很大的影响，摇培能更好使 得菌体与氧气充分接触。菌株GY-Il在120r/min-220r/min范围内产生的抑菌物质均能对 病原菌起到抑制作用。当转速为180r/min时，生物量达到最大，OD 600值为1.721，抑菌物 质对病原菌的抑制率达到最高。因此，最适转速为180r/min。
[0184] 实施例3菌株GY-Il对核桃基腐病病原菌的抑菌率测定
[0185] 通过平板对峙法，检测拮抗菌菌株GY-Il对核桃腐烂病原菌的抑制效果。测定方 法与实施例1中步骤1. 3的方法相同，其抑制率达80%。
[0186] 实施例4菌株GY-Il的无菌滤液对基腐病病原菌的抑菌率测定
[0187] 1、制备发酵液的无菌滤液
[0188] 将拮抗菌菌株GY-Il接种于盛有50mLNB培养基的150mL三角瓶中，于28°C、180r/ min振荡培养48h，获得的发酵液经lOOOOr/m离心20min后，取上清液用0. 22 μ m微孔滤膜 过滤，即得无菌滤液。
[0189] 其中NB培养基的配方为：蛋白胨10g，牛肉膏3g，NaCl 5g，水1000mL，pH7. 0-7. 2。
[0190] 2、无菌滤液对基腐病病原菌的抑菌率测定
[0191] 取拮抗菌菌株GY-11的无菌滤液5mL与20mL冷却到50°C的PDA培养基混合倒入 平板，制成带毒平板，以无菌水代替无菌滤液与PDA培养基混合，作为空白对照CK ;用直径 5_的打孔器将病原菌的PDA平板培养物打取菌块，将菌块点接于制备的带毒平板中央，于 28°C温度条件下培养4天，观察滤液抑菌效果，测量菌落直径计算抑菌率，设置三组平行对 照，计算公式如下：
[0192] 生长抑菌率（％) = (对照菌落直径-处理菌落直径V (对照平板菌落直径-菌 块直径）X 100%。
[0193] 结果表明，拮抗菌菌株GY-Il的无菌发酵滤液对核桃基腐病病原菌具有明显的抑 制作用，抑制率达83. 65%。
[0194] 尽管上述对本发明做了详细说明，但不限于此，本技术领域的技术人员可以根据 本发明的原理进行修改，因此，凡按照本发明的原理进行的各种修改都应当理解为落入本 发明的保护范围。
【主权项】
1. 一株核桃基腐病的拮抗细菌菌株BacillussubtilisGY-11，分类命名是：枯草芽孢 杆菌Bacillussubtilis;保藏编号为CGMCCNo. 10809。2. 如权利要求1所述的拮抗菌菌株得到的菌株培养物、发酵培养液或发酵培养液的过 滤液。3. 权利要求1所述的拮抗菌菌株为活性成分的生物菌剂。4. 权利要求1所述的拮抗菌菌株在防治核桃基腐病中的应用。5. 权利要求1所述的拮抗菌菌株在拮抗核桃基腐病病原菌中的应用。6. 权利要求2所述的拮抗菌株得到的菌株培养物、发酵培养液或发酵培养液的过滤液 在拮抗核桃基腐病病原菌中的应用。7. 如权利要求3所述的生物菌剂在拮抗核桃基腐病病原菌中的应用。
【专利摘要】本发明公开了一株核桃基腐病的拮抗细菌及其应用，涉及生物菌株领域。本发明的拮抗菌株为Bacillus subtilis GY-11，保藏编号为CGMCC No.10809。本发明的拮抗菌株是从核桃基腐病病害标本中分离获得，该菌株对植物生长无不良影响，具有抑制核桃基腐病病原菌的效果，其对核桃基腐病病原菌的抑制率可达80％以上，对核桃基腐病具有高效、显著的防治效果，有良好的开发应用前景。CGMCC No.1080920150514
【IPC分类】A01N63/00, C12R1/125, C12N1/20, A01N63/02, A01P3/00
【公开号】CN104894023
【申请号】CN201510314476
【发明人】马荣, 朱银飞, 田呈明, 梁英梅, 游崇娟, 范鑫磊
【申请人】新疆农业大学
【公开日】2015年9月9日
【申请日】2015年6月10日
【技术领域】
[0001] 本发明涉及一株拮抗菌菌株，特别涉及一株拮抗核桃基腐病病原菌的枯草芽孢杆 菌及其应用。
【背景技术】
[0002] 核桃（Juglans regia L.)属落叶乔木，是我国重要的经济树种，具有丰富的营养 价值和保健功能，可制取食用油和制作各种食品。核桃作为新疆的第二大果树，栽培面积占 全疆林果总面积的四分之一，核桃产业已成为新疆农民致富增收的重要支柱产业之一。核 桃适生范围广，常被栽植于山区和田园，是重要的用材树种和生态树种。近几年，随着新疆 核桃种植面积逐渐扩大，大面积种植单一品种、管理粗放以及栽培模式等原因，病虫害问题 日益增多，核桃基腐病（Pythium oligandrum Drechsler)的大面积严重发生制约了新疆核 桃产业的健康发展。
[0003] 目前，防治核桃基腐病的方法主要以化学方法为主，通过大田试验筛选出了咪酰 胺等防效较好的药剂。常规的化学药剂在防治核桃基腐病方面，有经济、高效和方便等优 势，但其易环境污染，不利于打造生态健康果园。最近几年通过生防菌株防治果树病害已成 为一种重要的防治手段，目前应用较多的拮抗细菌主要有芽孢杆菌Bacillus SUbtiliS、假 单胞杆菌Pseudomonas spp·、土壤放射杆菌Agrobacterium radiobacter等。然而通过诘 抗菌株防治核桃基腐病的研宄尚未见报道。因此，筛选出抗菌谱广、生防活性高及对环境安 全的新型拮抗细菌，制备成高效的生防菌剂，对该病害的防治具有重要意义。本研宄将从分 离核桃基腐病病原菌过程中得到的细菌与病原菌通过平板对峙培养法筛选出抑制效果较 好的生防细菌，并对其进行种类鉴定，为生防菌株的进一步开发利用奠定基础。
【发明内容】
[0004] 本发明的目的就是为了克服上述现有技术存在的问题，提供一种防治核桃基腐病 的拮抗菌菌株。
[0005] 本发明进一步提供含有上述菌株作为有效菌，可作为生物防治菌剂对核桃基腐病 进行防治。
[0006] 本发明进一步提供利用上述生物防治菌剂的防治方法。
[0007] 本发明人等从新疆和田地区墨玉县采集的核桃基腐病病害标本中分离出一株枯 草芽孢杆菌株，发现该菌株对植物生长无不良影响，具有抑制核桃基腐病病原菌的效果，并 由此完成了本发明。
[0008] 本发明涉及以下的菌株和核桃基腐病生物防治剂，以及核桃基腐病防治方法。
[0009] (1)枯草芽孢杆菌菌株GY-Il。
[0010] (2)核桃基腐病生防剂，其特征在于含有芽孢杆菌菌株GY-Il作为有效菌。
[0011] (3)核桃基腐病防治方法，其特征在于使用上述（2)中记载的核桃基腐病生防剂。
[0012][枯草芽孢杆菌菌株GY-Il的分离与保藏]
[0013] 本发明的枯草芽孢杆菌菌株GY-Il是从新疆和田地区墨玉县采集的核桃基腐病 病害标本中分离出的菌株。
[0014] 具体的，本发明是通过以下步骤得到核桃基腐病拮抗菌菌株GY-Il的：
[0015] 拮抗菌株的分离：将核桃基腐病病害标本材料的病健交界部位切成5mm的组织 块，先用75 %乙醇消毒该组织块30s，立即取出，再置于1 %次氯酸钠消毒90s，最后用无菌 水冲洗3次后，利用灭菌滤纸将组织块表面的水吸干，得到消毒后的组织块。将消毒后的组 织块在PDA培养基上进行培养，28°C恒温培养，每24h观察一次，使用划线法将长出的细菌 菌落纯化在NA平板上，得到单菌落，最后将得到的单菌落于4°C保存。
[0016] 拮抗菌株的筛选：将分离得到的单菌落进行活化培养，在距离病原菌2. Ocm处等 距离地将所述单菌落划线至已接种核桃基腐病病原菌的PDA平板上，以只接病原菌的PDA 平板培养基为对照，每个处理3个重复。28°C恒温培养，待对照的平板培养基的菌丝即将长 满时，测量细菌菌株与病原菌之间的抑菌带宽度，选取得到对核桃基腐病病菌抑菌带最宽 的拮抗菌株GY-Il。
[0017] 其中，所述PDA培养基的配方是去皮土豆200g，葡萄糖17g，琼脂15g，蒸馏水 lOOOmL，pH 自然。
[0018] 其中，所述NA培养基的配方为：蛋白胨10g，牛肉膏5g，NaCl 5g，琼脂15g，蒸馏水 1000mL? pH 7. 2〇
[0019] 该菌株根据其后所述的培养特征和生理生化特征，参考《常见细菌系统鉴定手册》 和《芽孢杆菌属》的描述，结合分子生物学结果确定拮抗菌株GY-Il为枯草芽孢杆菌，于 2015年5月14日作为"枯草芽孢杆菌（Bacillus subtilis)GY-ll"保藏于中国微生物菌 种保藏管理委员会普通微生物中心（简称CGMCC);保藏地址：北京市朝阳区北辰西路1号 院3号，中国科学院微生物研宄所。
[0020] (a)形态学性质
[0021] 形态：杆状
[0022] 单细胞大小：0· 7 ~0· 8 μπιΧ2 ~3 μπι
[0023] 运动性：+
[0024] 鞭毛着生状态：周生
[0025] 芽孢形态：椭圆
[0026] 芽抱大小：0· 6 ~0· 9 X I. 0 ~1. 5 μ m
[0027] (b)培养性质
[0028] 菌落形状：圆形
[0029] 菌落颜色：乳白色
[0030] 液体培养基培养：乳白色，白色边缘不圆滑似圆形，表层不规则突起，褶皱明显。
[0031] (C)生理学性质
[0032] 革兰氏染色：+
[0033] 接触酶试验：+
[0034] VP 实验：+
[0035] 甲基红试验：+
[0036] 淀粉水解：+
[0037] 柠檬酸的利用：+
[0038] 卵磷脂试验：-
[0039] 菌膜形成试验：+
[0040] 吲哚物质的生成：-[0041] 好氧兼性厌氧测定：_
[0042] 硫化氢的产生：_
[0043] 硝酸盐的还原：_
[0044] 2% NaCl ：++
[0045] 5 % NaCl ：++++
[0046] 7% NaCl ：++++
[0047] 10% NaCl ：++
[0048] 需要说明的是，" + "代表阳性，代表阴性，"++"代表生长一般，"++++"代表生 长最适。
[0049] (d)化学分类学性质
[0050] 菌株GY-11与枯草芽抱杆菌Bacillus subtilis的16SrDNA序列同源性为99%， 在GenBank注册的序列号为KP876486。从基于邻接法构建的16SrDNA系统发育树（如图 4所不）可以发现；菌株GY-Il与模式菌株枯草芽孢杆菌（KF496886)聚类在同一大分支内 (支持率99% )，并结合菌株的形态学及生理生化特征，最终确定菌株GY-Il为枯草芽孢杆 菌 Bacillus subtilis。
[0051] [GY-11菌株的培养]
[0052] 有关本发明的GY-Il菌株的培养方法可以选择任何适宜的培养基和培养条件。此 外，除液体培养基之外可以使用加入了琼脂的斜面培养基和平板培养基等固体培养基。通 过培养使GY-Il菌株增殖以获得所需的菌体量。
[0053] 培养基中的碳源可以利用所述GY-Il菌株可以同化的所有物质。具体地说，除葡 萄糖、半乳糖、D-土塘、蔗糖、麦芽糖、麦芽提取物、淀粉水解物等糖之外，还有GY-Il可以利 用的各种合成或天然碳源，但是不包括乙酸。
[0054] 培养基中的氮源，同样的，除含有有机氮的蛋白胨、酵母提取物、硫酸铵、谷氨酸、 酵母膏、磷酸二氢铵、硝酸钾、氯化铵、硝酸钙、天冬氨酸、亚硝酸钠之外，还可以是GY-Il菌 株可以利用的各种合成或天然氮源，但是不包括尿素。
[0055] 根据常规的微生物培养方法，必要时可以相应地添加 NaCl、磷酸盐等无机盐类、 钙、镁、铁等金属盐，维生素、氨基酸等微量营养源。
[0056] 培养可以在摇床培养、震荡培养、通气培养等好氧条件下进行。培养温度为20~ 40°C，优选25~30°C，进一步优选为25°C ;pH5~9,优选6~7,进一步优选为7 ;培养时间 24-48h，优选24h为宜，其中，摇床培养的转速为120-220r/min，优选160-200r/min，进一步 优选为180r/min。
[0057] [GY-11菌株的应用]
[0058] 对于本发明的枯草芽孢杆菌GY-11，使其培养物（含有菌体）或其处理产物（培 养物和其他成分混合物等）、或培养分离的菌体（培养物经离心分离所得的菌体或其他成 分的混合物等）及其处理产物（培养分离的菌体和其它成分的混合物等），以及有这些处理 产物（这些的经液体或固体稀释的稀释物）存在于根、茎、叶、种子等植物体上，或存在于栽 培土壤中，具有抑制核桃基腐病病原菌的性质。
[0059] 本发明的核桃基腐病生防剂是含有GY-Il菌株为有效菌的生防剂。在本发明的生 防剂可以使用GY-Il菌株，也可以将GY-Il菌株和其变异体一起使用。变异体是具有上述 GY-Il菌株的细菌学性质、具有核桃基腐病防治作用的物质，可以利用自然突变株、用紫外 线或化学诱变剂所得的突变株、或细胞融合株以及基因重组株。本发明中，在核桃基腐病生 防剂中所含的GY-Il菌株包括GY-Il菌株的变异体。
[0060] 本说明书 中所述的防治不仅指对病的预防、抵制，也用于表示包含有去除、杀死的 效果。因此，对于已感染了病原菌的植物，应用本发明的植物病害生防剂可从植物中去除病 原菌，也可以预防由病原菌引起的病害或病害的恶化。
[0061] 此外，本发明的核桃基腐病生防剂中的GY-Il菌株除单独以菌体或培养物使用 外，还可以作为用非活性的液体或固体载体稀释，必要时添加表面活性剂、其他助剂的药剂 使用。具体的制剂例，例如粒剂、粉剂、水和剂、悬浊剂、乳剂等剂型。优选地载体，例如滑 石、皂土、粘土、高岭土、硅藻土、白碳、蛭石、消石灰、硅砂、硫酸铵、尿素、多孔固体载体、水、 异丙醇、二甲苯、环已酮、甲基萘、烷基二醇等以载体等。作为表面活性剂和分散剂，例如二 萘基甲磺酸盐、乙醇硫酸酯盐、烷基芳基磺酸盐、木质素磺酸盐、聚氧乙烯二醇醚、聚氧乙烯 烷基芳基醚、聚氧乙烯脱水山梨糖醇单烷基化合物等。作为助剂，例如羧甲基纤维素、聚乙 二醇、丙二醇、阿拉伯胶、黄原胶等。作为保护剂，例如脱脂牛奶、PH缓冲剂等。此时，GY-Il 菌株活菌体的量和/或培养物的量、以及施用时期和适用量可根据上述应用活菌体的情况 适宜的确定。
[0062] 本发明提供的生防剂可以直接施用，也可以用水等稀释后施用。所述生防剂的施 用方法没有特别的限定，例如，直接向植物撒播的方法、添加到向植物中添加的水或肥料中 的方法等。此外，制剂的施用量优选根据施用方法、发生倾向、受害程度、环境条件、使用剂 型等的不同作适当的调整。
[0063][有益效果]
[0064] 本发明利用新疆和田地区墨玉县采集得的核桃基腐病病害标本中分离出一种枯 草芽孢杆菌株GY-Il对核桃基腐病病原菌具有高效的抑制作用，并且该菌株对温度、pH值 等自然环境条件的适应范围广，能使核桃基腐病病原菌正常的菌丝发生断裂、解体，从而抑 制菌丝的生长，其抑制率均在80%以上。
【附图说明】
[0065] 图1是本发明的核桃基腐病诘抗菌株Bacillus subtilis GY-Il在不同时间段的 生长曲线；
[0066] 图2本发明的核桃基腐病拮抗菌株Bacillus subtilis GY-Il的革兰氏染色后的 菌体形态图
[0067] 图3是本发明的核桃基腐病拮抗菌株Bacillus subtilis GY-Il的菌落形态图；
[0068] 图4是基于16S rDNA对菌株GY-Il的系统发育树；
[0069] 图5表示不同装液量对菌株GY-Il发酵的影响；
[0070] 图6表示不同接种量对菌株GY-Il发酵的影响；
[0071] 图7表示不同初始pH值对菌株GY-Il发酵的影响；
[0072] 图8表示不同温度对菌株GY-Il发酵的影响；
[0073] 图9表示不同转速对菌株GY-Il发酵的影响。
【具体实施方式】
[0074] 下面结合具体实施例来进一步描述本发明，本发明的优点和特点将会随着描述而 更为清楚。但这些实施例仅是范例性的，并不对本发明的范围构成任何限制。本领域技术 人员应该理解的是，在不偏离本发明的精神和范围下可以对本发明技术方案的细节和形式 进行修改或替换，但这些修改和替换均落入本发明的保护范围内。
[0075] 需要说明的是，本发明使用的培养基如下：
[0076] 碳源测定时用碳源基础培养基成分：每1000 mL含有（NH4) 2S042. 0g，NaH2PO4 · H2O 0.5g，K2HP0 40.5g，MgS04.7H20 0.2g，CaCl2.2H20 0.18，口!17.0-7.2，分别加入0.5%~1% 的葡萄糖、蔗糖、果糖、乳糖、麦芽糖、D-木糖、淀粉、乙醇丙三醇、甘露醇、山梨酸、乙酸和柠 檬酸，或〇. 1 %~0.2%的葡萄糖、蔗糖、果糖、乳糖、麦芽糖、D-木糖、淀粉、乙醇丙三醇、甘 露醇、山梨酸、乙酸和柠檬酸，作为碳源。
[0077] 氮源测定时用氮源基础培养基成分：每1000 mL含有Na2HP042. 16g，KH2PO4L 36g， MgSO4 ·7Η20 0· 2g，FeS040. 5g，CaCl25. 00g，葡萄糖 10g，pH7. 0-7. 2,分别加入0· 05%~0· 1% 的蛋白胨、酵母膏、硫酸铵、硝酸钙、磷酸二氢铵、亚硝酸钠、尿素、谷氨酸、天冬氨酸、硝酸 钾、氯化铵作为氮源。
[0078] PDA培养基的配方是去皮土豆200g，葡萄糖17g，琼脂15g，蒸馏水1000mL，pH自 然；NA培养基成分：蛋白胨10g，牛肉膏5g，NaC15g，琼脂15g，蒸馏水lOOOmL，pH 7. 2 ;LB 培养基成分：胰蛋白胨l〇g，酵母提取物5g，NaCl 10g，蒸馏水调节总体积为1000mL，pH 7. 0-7. 2 ;NB培养基成分：蛋白胨10g，牛肉膏3g，NaCl 5g，蒸馏水调节总体积为1000mL， pH 7. 0-7. 2 ;高氏 1 号培养基成分：可溶性淀粉 20g，KNO3Ig, NaCl 0. 5g，K2HPO4O. 5g， MgSO4 · 7H20 0· 5g，FeS04 · 7H20 0· 01g，蒸馏水调节总体积为 1000mL，pH 7· 0-7. 2 ;玉米粉 培养基成分：玉米粉5g，蛋白胨0. lg，葡萄糖lg，蒸馏水调节总体积为1000mL，pH7. 0-7. 2 ; 参考培养基1成分：牛肉膏3g，蛋白胨5g，酵母粉0. 5g，葡萄糖10g，蒸馏水调节总体积为 1000mL，ρΗ7· 0-7. 2。
[0079] 实施例1拮抗菌株的获得
[0080] 供试菌株：核桃基腐病病原菌由新疆农业大学林学与园艺学院病理实验室提供， 采于新疆和田地区墨玉县。
[0081] 1.拮抗菌株的分离
[0082] I. 1病害标本的处理
[0083] 将核桃基腐病病害标本材料的病健交界部位切成5mm的组织块，用75%乙醇消毒 该组织块30s，立即取出并置于1 %次氯酸钠消毒90s，最后用无菌水冲洗3次后利用灭菌滤 纸吸取组织块表面的水分，得到消毒后的组织块。
[0084] 1. 2分离菌株
[0085] 将得到的消毒后的组织块在PDA培养基进行培养，28°C恒温条件下，24h观察一 次，当组织块周围长出抑菌圈时，使用划线法将所述抑菌圈的细菌菌落划线至NA平板培养 基上进行纯化，得到单菌落，最后将得到的单菌落于4°C保存。I. 3拮抗菌株的筛选 [0086] 将核桃基腐病病菌接种于PDA平板上，在28°C下培养3天，用直径5mm的打孔器打 取菌落生长一致的菌块接种于PDA平板中央，将分离得到的细菌划线接于PDA平板中央的 病原菌两侧的2. Ocm处进行培养；以只接病原菌的PDA平板对照平板，28°C恒温培养，当观 察到对照的PDA平板培养基中的菌丝即将长满时，测量接种拮抗菌菌株与病原菌之间的抑 菌带宽度，计算抑制率，选择抑菌带最宽的菌株于4°C保存。
[0087] 其中：
[0088]
[0089] 结果表明：核桃基腐病拮抗菌株Bacillus subtilis GY-Il对核桃基腐病病原菌 的抑制效果很好，抑菌带宽度较宽，抑制率可达80%。
[0090] 2拮抗菌株的生长曲线的绘制
[0091] 挑取抑菌带最宽的菌株的单菌落接种于容量为250mL、含有50mL NB培养基的三 角瓶中，震荡培养24h，其中培养温度为28°C，震荡速率为180r/min，制得种子液。
[0092] 取盛有50mL NB培养液的250mL三角瓶25个，分别编号为0、2、4、6、8、10、12、14、 16、18、20、22、24、26、28、30、32、34、36、38、40、42、44、46、48h，其中每个编号表示不同的培 养时间。向所述编号的25个NB培养基中分别接种2mL的种子液，在温度条件为28°C下进 行振荡培养，以灭菌的NB培养基为对照。
[0093] 分别从对应时间编号的三角瓶取出培养液，测定不同培养时间的菌株0D_值。根 据测得的数值绘制生长曲线。（生长曲线如图1)所示。
[0094] 结果表明：菌株GY-Il在0~4h生长较慢，4~IOh生长最快，菌株呈典型的对数 生长；10~30h的时间段，菌体的生长量变化不大，达到稳定期；在30~48h菌株的生长量 有明显的下降趋势，此后进入衰亡期。
[0095] 3.拮抗菌株的鉴定
[0096] 3. 1菌株的形态学特征
[0097] 将活化后的菌株GY-Il划线接种于NA平板上，28°C培养24h，涂于载玻片上进行负 染，显微镜下观察菌落特征，鉴定方法参阅东秀珠等人编著的《常见细菌系统鉴定手册》（北 京：科学出版社，2001:349-398)。图3为拮抗菌株GY-11革兰氏染色后菌体形态图，测定结 果如下：
[0098] 拮抗菌株GY-Il的菌体为杆状（如图2所示），革兰氏染色呈现紫色，鞭毛特征不 明显，为革兰氏阳性菌，其单菌落为圆形（如图3所示），乳白色，白色边缘不圆滑似圆形，表 层不规则突起，褶皱明显。
[0099] 用接种针分别挑取24h培养的菌株，分别接种于PDA、PSA的液体培养基和NB、LB 培养基，封口，180r/min，28°C下振荡培养24h，测定OD6cJ直，观察菌株的最适培养基。
[0100] 结果表明，菌株在不同培养基上生长存在一定差异，在NA培养基上生长最好，其 次是PDA培养基。
[0101] 3. 2菌株的生理生化特性的测定
[0102] 参照东秀珠等人编著的《常见细菌系统鉴定手册 》（北京：科学出版社， 2001:349-398)和戈登，R.E.等著，蔡妙英译的《芽孢杆菌属》中介绍的方法，观察菌株及菌 落形态，测定拮抗细菌的需氧特征、NaCl耐受度、柠檬酸盐利用、丙二酸盐利用、接触酶、V-P 试验、甲基红试验、明胶液化等生理生化指标测得结果如表1所示。
[0103] 表1菌株GY-Il生理生化特性
[0104]
[0105] 注释：" + "代表阳性，代表阴性，"++"代表生长缓慢，"+++"代表生长一般 "++++"代表生长最适
[0106] 如表1所示，GY-Il菌株的生理生化特性表明：菌株为革兰氏阳性菌，厌氧菌，有 氧条件下生长微弱；最适的生长温度为21°C ;在含有5%或7% NaCl的液体培养基生长良 好，盐度越高，生长缓慢，说明菌株耐盐性一般；菌株过氧化氢试验为阳性反应；可使明胶 液化；有菌膜形成；甲基红试验呈阳性反应；V-P试验为红色，为阳性反应（如表1所示）。 形态学与生理生化特性的鉴定结果表明，菌株GY-Il与芽孢杆菌属的描述一致，因此菌株 GY-Il为枯草芽孢杆菌。
[0107] 3. 3菌株的分子生物学鉴定
[0108] 利用Promega公司的Al 120DNA提取试剂盒提取菌株GY-Il的DNA，提取方法按说 明书中的步骤进行，设计引物I 63f(5'-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3'）和引物II 1387r(5'-A CGGCTACCTTGTTACGACT-3'），对提取得的DNA进行PCR扩增，其中反应体系如表2所示，反应 条件如表3所示：
[0109] 表2 PCR反应体系
[0110]
[0111] 表3 PCR反应条件
[0112]
[0113] 对获得的PCR产物在1%的琼脂糖凝胶电泳成像，并送至北京天根生物有限公司 对PCR产物进行测序，测序结果见序列表SEQ NO. 1，序列经ClustalX 1.83比对、校正和编 辑后，用MEGA5. 0软件中的NJ (Neighbor-Joining，邻接法）法构建系统发育树，应用自展法 (bootstrap)检验系统树，自展数据集为1000次。以Amphibacillus xylanus作为外群。
[0114] 将测序结果在GenBank数据库中进行同源性比对，BLAST结果表明，菌株与枯草 芽孢杆菌Bacillus subtilis的16SrDNA序列同源性为99%，在GenBank注册的序列号为 KP876486。从基于邻接法构建的16SrDNA系统发育树（如图4所示）可以发现；菌株GY-Il 与模式菌株枯草芽孢杆菌（KF496886)聚类在同一大分支内（支持率99%)，说明该菌株与 模式菌株完全相同。
[0115] 根据《常见细菌鉴定手册》，结合菌株的形态学及生理生化特征，最终确定菌株 GY-11 为枯草芽抱杆菌 Bacillus subtilis。
[0116] 本发明的枯草芽抱杆菌Bacillus subtilis GY-11菌株已与2015年5月14日保 藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心（简称CGMCC，北京市朝阳区北辰西 路），中国科学院微生物研宄所；保藏号为CGMCC No. 10809。
[0117] 本发明的枯草芽孢杆菌Bacillus subtilis GY-Il菌株的保藏培养基为常规的NA 培养基，培养温度为28 °C。
[0118] 实施例2菌株的发酵培养
[0119] 1、病原菌的纯化
[0120] 挑取保存于试管中的病原菌菌丝置于PDA平板中央，黑暗条件28°C恒温培养2-3d 后备用。
[0121] 2、菌株GY-Il种子液的制备和发酵的制备
[0122] 将菌株GY-Il通过划线法活化置于NA培养基上，28°C恒温培养24h后，挑取单菌 落接种装置有50mLNB培养基的250mL的三角瓶中，28°C、180r/min摇床培养24h制成种子 液。
[0123] 3、培养基的筛选
[0124] 取ImL菌株GY-Il的种子液分别接种至装有50mL已灭菌的PDA培养液、高氏一号 培养液、玉米粉培养液、参考培养基的250mL的三角瓶中，28°C、180r/min摇床培养24h后， 测定菌株在不同培养液中的〇D_值，测得结果如表4所示。
[0125] 其中，OD6cJ直采用现有技术常用的测定方法，优选为紫外可见分光光度计进行测 定。
[0126] 表4不同培养基对菌株GY-Il的影响
[0127]
[0128] 注：+表示适宜生长，-表示不适宜生长。
[0129] 由表4可知，菌株GY-Il在供试的6种培养基中均能生长，但在不同的培养基中的 生长量存在显著差异，其中，LB培养基为菌株GY-Il最适的培养基，NB次之，玉米粉培养基 中菌体生长量最少。
[0130] 4、菌株对不同碳源和氮源的利用
[0131] 4. 1碳源基础培养基的制备
[0132] 参考《常见细菌系统鉴定手册》中的方法，再利用碳源基础培养基中分别加入不同 的碳源：葡萄糖、鹿糖、果糖、乳糖、麦芽糖、D-木糖、淀粉、乙醇丙三醇、甘露醇、山梨酸、乙 酸和柠檬酸，碳源的最终浓度除糖醇类为〇. 5~1%之外，一般为0. 1%~0. 2%，制得含有 不要同碳源的基础培养基。
[0133] 4. 2氮源基础培养基的制备
[0134] 参考《常见细菌系统鉴定手册》中的方法，再利用氮源培养基中分别加入不同的氮 源：蛋白胨、酵母膏、硫酸铵、硝酸钙、磷酸二氢铵、亚硝酸钠、尿素、谷氨酸、天冬氨酸、硝酸 钾、氯化铵，氮源浓度为0. 05%~0. 1%，制备不同氮源的基础培养基。
[0135] 4. 3 接种
[0136] 菌环挑取活化后的GY-Il置于ImL无菌水中，震荡混匀制备成菌悬液，吸取10 μ 1 菌悬液，分别接种于含不同碳源和不同氮源的基础培养基的5mL试管中，设置不接菌的培 养基为对照，28°C、转速180r/min摇床培养24h，记录菌株在不同碳源和氮源培养基中的 〇D_值，比较菌株GY-Il对不同碳源和氮源的利用情况。测得结果如表5和表6所示。
[0137] 表5不同碳源对拮抗细菌生长量的影响
[0138]
[0139] 注：+表示适宜生长，-表示不适宜生长。
[0140] 由结果可知，菌株GY-Il在以乙酸作为碳源时，菌体生长量为负，表明乙酸不适做 碳源；当葡萄糖最为碳源时，菌体的生长量最大，淀粉、蔗糖和D-木糖次之，山梨醇和乙醇 最低，因此葡萄糖为最佳碳源。
[0141] 表6不同碳源对拮抗细菌生长量的影响
[0142]
[0143] 注：+表示适宜生长，-表示不适宜生长。
[0144] 由表6可知，菌株在以尿素最为氮源时，菌体生长量为负，表面尿素不适合最为氮 源，蛋白胨作为氮源时，生长量最大，硫酸铵、谷氨酸和酵母膏次之，天冬氨酸和亚硝酸钠最 为氮源时生长量最低，可见，蛋白胨为GY-Il的最佳氮源。
[0145] 5装液量的确定
[0146] 分别取30mL、50mL、70mL、90mL、110mL、130mL最适培养基加入250mL的三角瓶中， 接种量为4%、pH为7、温度为28°C、转速为180r/min摇培24h后，测定菌体的生长量和菌 株GY-Il对病原菌的抑制率，每个处理3次重复。
[0147] 测定方法如下：
[0148] 菌体生长量的测定方法为：取菌株GY-Il不同处理的发酵液，在分光光度计上测 600nm菌液的OD值，以OD _值来表示菌体生长量的多少。
[0149] 菌株GY-Il对病原菌的抑制率的测定方法：在位于PDA平板直径三分之一处用直 径为5_的打孔器打孔，去除培养基。将不同处理得到的菌株GY-11的发酵液用0. 22 μ m微 孔滤膜过滤即得无菌滤液，取40uL体积的无菌滤液注入打孔处，以无菌培养基为对照；在 已纯化有病原菌的PDA平板上，打取直径为5mm、菌龄一致的菌饼点接于已注入菌株GY-Il 菌悬液的PDA平板同一直径三分之二处，每个处理3次重复，28°C恒温培养，待对照长满时 参考公式计算生长抑制率。计算结果如图5所示；
[0150] 其中：
[0151]
[0152] 根据图5所示的计算结果，当250mL的三角瓶装液量为50mL时菌体的生物量到达 最大，〇D_值达1. 863,产生的抑菌物质对病原菌的抑制率达到最高，为52. 9%。当装液量 达到70mL时，生物量开始下降，且抑菌活性也降低，说明菌株GY-Il生长对通气量有一定的 要求，装液量过少或过大，都不利于菌株的发酵。因此，250mL的三角瓶装液50mL为最佳装 液量。
[0153] 6、接种量对菌株GY-Il生长量和抑菌效果的影响
[0154] 在确定最优装液量后，分别按照装液量体积的2%、4%、6%、8%、10%接入种子 液，pH为7、28°C、转速为180r/min摇培24h后，测定菌体的生长量和菌株GY-Il对病原菌 的抑制率，每个处理3次重复，测定方法如下：
[0155] 菌体生长量的测定方法为：取菌株GY-Il不同处理的发酵液，在分光光度计上测 600nm菌液的OD值，以OD 600值来表示菌体生长量的多少。
[0156] 菌株GY-Il对病原菌的抑制率的测定方法：在位于PDA平板直径三分之一处用直 径为5_的打孔器打孔，去除培养基。将不同处理得到的菌株GY-1 1的发酵液用0. 22 μ m微 孔滤膜过滤即得无菌滤液，取40uL体积的无菌滤液注入打孔处，以无菌培养基为对照；在 已纯化有病原菌的PDA平板上，打取直径为5mm的菌龄一致的菌饼点接于已注入菌株GY-Il 菌悬液的PDA平板同一直径三分之二处，每个处理3次重复，28°C恒温培养，待对照长满时 参考公式计算生长抑制率。计算结果如图6所示；
[0157] 其中：
[0158]
[0159] 如图6所示的不同接种量对菌株GY-Il发酵的影响，GY-Il在接种量为2% -10% 的范围内均具有抑菌活性，当接种量为6%时，其生物量达到最大，OD6c?达1.903。产生的 抑菌物质对病原菌的抑制率达到最高，为51. 7%。当接种量为80%时，其生物量与抑菌活 性均呈下降趋势，可能由于接种量过大，导致培养基营养成分过度消耗，因此最适接种量为 6% 〇
[0160] 7、pH值对菌株GY-Il生长量和抑菌效果的影响
[0161] 将最适液体培养基的pH分别调至5、6、7、8、9并加入250mL的三角瓶中，在最优 接种量和装液量条件下、28°C、180r/min摇培24h后，测定菌体的生长量和菌株GY-Il对病 原菌的抑制率。
[0162] 测定方法如下：
[0163] 菌体生长量的测定方法为：取菌株GY-Il不同处理的发酵液，在分光光度计上测 600nm菌液的OD值，以OD _值来表示菌体生长量的多少。
[0164] 菌株GY-Il对病原菌的抑制率的测定方法：在位于PDA平板直径三分之一处用直 径为5_的打孔器打孔，去除培养基。将不同处理得到的菌株GY-11的发酵液用0. 22 μ m微 孔滤膜过滤即得无菌滤液，取40uL体积的无菌滤液注入打孔处，以无菌培养基为对照；在 已纯化有病原菌的PDA平板上，打取直径为5mm的菌龄一致的菌饼点接于已注入菌株GY-Il 菌悬液的PDA平板同一直径三分之二处，每个处理3次重复，28°C恒温培养，待对照长满时 参考公式计算生长抑制率。计算结果如图7所示；
[0165] 其中：
[0166]
[0167] 根据图7所示的计算结果，菌株GY-Il对pH的适应范围较宽，在pH为5-9的范围 内，菌株均能生长。其中在pH为7时其生物量最大，OD _达到1.858。产生的抑菌物质对 病原菌的抑制率达到最高，为50. 6%。pH为8时，生物量与抑菌活性均明显下降，说明中性 条件下有利于菌株的生长。因此，最适初始PH为7。
[0168] 8、温度对菌株GY-Il生长量和抑菌效果的影响
[0169] 将最适液体培养基分别放置在20 °C、25 °C、30 °C、35 °C、40 °C的温度下，在最优接种 量、装液量为、pH的条件下，180r/min摇培24h后，测定菌体的生长量和菌株GY-Il对病原 菌的抑制率。
[0170] 测定方法如下：
[0171] 菌体生长量的测定方法为：取菌株GY-Il不同处理的发酵液，在分光光度计上测 600nm菌液的OD值，以OD _值来表示菌体生长量的多少。
[0172] 菌株GY-Il对病原菌的抑制率的测定方法：在位于PDA平板直径三分之一处用直 径为5_的打孔器打孔，去除培养基。将不同处理得到的菌株GY-11的发酵液用0. 22 μ m微 孔滤膜过滤即得无菌滤液，取40uL体积的无菌滤液注入打孔处，以无菌培养基为对照；在 已纯化有病原菌的PDA平板上，打取直径为5mm、菌龄一致的菌饼，点接于已注入菌株GY-Il 菌悬液的PDA平板的同一直径的三分之二处，每个处理3次重复，28°C恒温培养，待对照长 满时参考公式计算生长抑制率。计算结果如图8所示；
[0173] 其中：
[0174]
[0175] 根据图8所示的计算结果，菌株GY-Il在20_40°C范围内均可生长，产生的抑菌物 质对病菌的抑制率均在40%以上。其中在25°C时菌株GY-Il的生物量达到最大值，OD 6c?为 1.895,菌株产生的抑菌物质对病菌的抑制率也达到最高值，为51. 8% (图4)，30°C时生物 量和抑制率开始下降。25°C为最适发酵温度。
[0176] 9、转速对菌株GY-Il生长量和抑菌效果的影响
[0177] 将最适液体培养基分别放置于不同转速下：140r/min、160r/min、180r/min、200r/ min、220r/min，在最优接种量、装液量、pH、温度的条件下培养24h后，测定菌体的生长量和 菌株GY-Il对病原菌的抑制率。
[0178] 测定方法如下：
[0179] 菌体生长量的测定方法为：取菌株GY-Il不同处理的发酵液，在分光光度计上测 波长为600nm处菌液的OD值，以OD _值来表示菌体生长量的多少。
[0180] 菌株GY-Il对病原菌的抑制率的测定方法：在位于PDA平板直径三分之一处用直 径为5_的打孔器打孔，去除培养基。将不同处理得到的菌株GY-11的发酵液用0. 22 μ m微 孔滤膜过滤即得无菌滤液，取40uL体积的无菌滤液注入打孔处，以无菌培养基为对照；在 已纯化有病原菌的PDA平板上，打取直径为5mm的菌龄一致的菌饼点接于已注入菌株GY-Il 菌悬液的PDA平板同一直径三分之二处，每个处理3次重复，28°C恒温培养，待对照长满时 参考公式计算生长抑制率。计算结果如图9所示；
[0181] 其中：
[0182]
[0183] 根据图9的计算结果，摇培的转速对菌体的生物量有很大的影响，摇培能更好使 得菌体与氧气充分接触。菌株GY-Il在120r/min-220r/min范围内产生的抑菌物质均能对 病原菌起到抑制作用。当转速为180r/min时，生物量达到最大，OD 600值为1.721，抑菌物 质对病原菌的抑制率达到最高。因此，最适转速为180r/min。
[0184] 实施例3菌株GY-Il对核桃基腐病病原菌的抑菌率测定
[0185] 通过平板对峙法，检测拮抗菌菌株GY-Il对核桃腐烂病原菌的抑制效果。测定方 法与实施例1中步骤1. 3的方法相同，其抑制率达80%。
[0186] 实施例4菌株GY-Il的无菌滤液对基腐病病原菌的抑菌率测定
[0187] 1、制备发酵液的无菌滤液
[0188] 将拮抗菌菌株GY-Il接种于盛有50mLNB培养基的150mL三角瓶中，于28°C、180r/ min振荡培养48h，获得的发酵液经lOOOOr/m离心20min后，取上清液用0. 22 μ m微孔滤膜 过滤，即得无菌滤液。
[0189] 其中NB培养基的配方为：蛋白胨10g，牛肉膏3g，NaCl 5g，水1000mL，pH7. 0-7. 2。
[0190] 2、无菌滤液对基腐病病原菌的抑菌率测定
[0191] 取拮抗菌菌株GY-11的无菌滤液5mL与20mL冷却到50°C的PDA培养基混合倒入 平板，制成带毒平板，以无菌水代替无菌滤液与PDA培养基混合，作为空白对照CK ;用直径 5_的打孔器将病原菌的PDA平板培养物打取菌块，将菌块点接于制备的带毒平板中央，于 28°C温度条件下培养4天，观察滤液抑菌效果，测量菌落直径计算抑菌率，设置三组平行对 照，计算公式如下：
[0192] 生长抑菌率（％) = (对照菌落直径-处理菌落直径V (对照平板菌落直径-菌 块直径）X 100%。
[0193] 结果表明，拮抗菌菌株GY-Il的无菌发酵滤液对核桃基腐病病原菌具有明显的抑 制作用，抑制率达83. 65%。
[0194] 尽管上述对本发明做了详细说明，但不限于此，本技术领域的技术人员可以根据 本发明的原理进行修改，因此，凡按照本发明的原理进行的各种修改都应当理解为落入本 发明的保护范围。
【主权项】
1. 一株核桃基腐病的拮抗细菌菌株BacillussubtilisGY-11，分类命名是：枯草芽孢 杆菌Bacillussubtilis;保藏编号为CGMCCNo. 10809。2. 如权利要求1所述的拮抗菌菌株得到的菌株培养物、发酵培养液或发酵培养液的过 滤液。3. 权利要求1所述的拮抗菌菌株为活性成分的生物菌剂。4. 权利要求1所述的拮抗菌菌株在防治核桃基腐病中的应用。5. 权利要求1所述的拮抗菌菌株在拮抗核桃基腐病病原菌中的应用。6. 权利要求2所述的拮抗菌株得到的菌株培养物、发酵培养液或发酵培养液的过滤液 在拮抗核桃基腐病病原菌中的应用。7. 如权利要求3所述的生物菌剂在拮抗核桃基腐病病原菌中的应用。
【专利摘要】本发明公开了一株核桃基腐病的拮抗细菌及其应用，涉及生物菌株领域。本发明的拮抗菌株为Bacillus subtilis GY-11，保藏编号为CGMCC No.10809。本发明的拮抗菌株是从核桃基腐病病害标本中分离获得，该菌株对植物生长无不良影响，具有抑制核桃基腐病病原菌的效果，其对核桃基腐病病原菌的抑制率可达80％以上，对核桃基腐病具有高效、显著的防治效果，有良好的开发应用前景。CGMCC No.1080920150514
【IPC分类】A01N63/00, C12R1/125, C12N1/20, A01N63/02, A01P3/00
【公开号】CN104894023
【申请号】CN201510314476
【发明人】马荣, 朱银飞, 田呈明, 梁英梅, 游崇娟, 范鑫磊
【申请人】新疆农业大学
【公开日】2015年9月9日
【申请日】2015年6月10日
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