检测金刚烷胺的酶联免疫试剂盒及其应用
检测金刚烷胺的酶联免疫试剂盒及其应用
【技术领域】
[0001] 本发明涉及酶联免疫检测技术，具体涉及一种用于检测金刚烷胺的酶联免疫试剂 盒，可定性、定量检测动物组织中金刚烷胺药物的残留量。
【背景技术】
[0002] 金刚烷胺属于抑制流感病毒的抗病毒类药物，常用于禽类抵抗禽流感，因而受到 广大养殖户的青睐，目前美国已经确定其对于抗帕金森病药物的有效性是不确定的，因缺 乏安全性和有效性的数据，金刚烷胺在美国不再被推荐用作治疗流感，且对神经系统，心血 管系统有一定的毒副作用，国内已经禁止做为兽药使用。
[0003] 目前，地方标准《DB21/2394-2014食品安全地方标准鸡肝和鸡肉中金刚烷胺、金 刚乙胺的检测超高效液相色谱串联质谱法》，《DB32/T1163-2007鸡肝中金刚烷胺残留量的 测定液相色谱-串联质谱法》均采用仪器方法，仪器方法具有灵敏度高、结果准确等优点，但 是资金和人员等投入成本较高。本发明应用酶联免疫法，测定动物组织中金刚烷胺药物的 残留量，具有检测限低、特异性强、操作简便、检测速度快、检测成本低，非常容易推广等优 点。
【发明内容】
[0004] 本发明的目的在于提供一种能够检测动物组织中金刚烷胺药物残留量的酶联免 疫试剂盒，并提供一种高效、准确、简便、适于大批量样品筛选的定性、定量检测方法。
[0005] 本发明试剂盒，它包括：包被有包被原的酶标板、金刚烷胺标准品溶液、酶标抗体、 底物显色液、终止液、洗涤液、复溶液，所述包被原为金刚烷胺偶联抗原，所述酶标抗体为酶 标记的金刚烷胺抗体。
[0006] 所述金刚烷胺偶联抗原是由金刚烷胺半抗原与载体蛋白偶联得到，所述金刚烷胺 半抗原是由金刚烷胺和氯丙酸反应得到，所述载体蛋白可为鼠血清蛋白、甲状腺蛋白、 牛血清白蛋白、兔血清蛋白、人血清蛋白、卵清蛋白、血蓝蛋白或纤维蛋白原。
[0007] 所述金刚烷胺特异性抗体是以金刚烷胺偶联抗原作为免疫原制备获得，所述金刚 烷胺特异性抗体可为金刚烷胺单克隆抗体或金刚烷胺多克隆抗体，其中优选金刚烷胺单克 隆抗体。
[0008] 所述酶标抗体的标记酶为辣根过氧化物酶或细菌提取碱性磷酸酯酶，其中优选辣 根过氧化物酶；酶标抗体是由酶和金刚烷胺抗体偶联得到的。
[0009] 为了更方便现场监控和大量样本筛查，所述试剂盒还包括金刚烷胺标准品溶液、 底物显色液、终止液、洗绦液、复溶液。
[0010] 所述金刚烷胺标准品溶液6瓶，浓度分别为0yg/L、0. 5yg/L、1. 5yg/L、4. 5yg/ L、13. 5yg/L、40. 5yg/L。
[0011] 当标记酶为辣根过氧化物酶时，所述底物显色液由底物液A液和底物液B液组成， A为过氧化氢或过氧化脲，B液为邻苯二胺或四甲基联苯胺，所述终止液为1~2mol/L的硫 酸或液盐酸缓冲液；当标记酶为细菌提取碱性磷酸酯酶时，所述底物显色液为对硝基磷酸 盐缓冲液，所述终止液为1~2mol/L氢氧化钠溶液。
[0012] 所述洗涤液优选为pH值为7. 4,含有0. 5%~1. 0%吐温-20、0. 01%。~0. 03%。叠 氮化钠防腐剂、〇. 1~〇. 3mol/L的磷酸盐缓冲液，所述百分比为重量体积百分比。
[0013] 所述复溶液优选为pH值为7. 0、0. 02mol/L的磷酸盐缓冲液，所述百分比为重量体 积百分比。
[0014] 其中在酶标板制备过程中所用到的包被缓冲液为pH值为9. 6,0. 05mol/L的碳酸 盐缓冲液，封闭液为pH值为7. 1~7. 5,含有1 %~3%酪蛋白、0. 1~0. 3mol/L的磷酸盐 缓冲液，所述百分比为重量体积百分比。
[0015] 本发明中酶标板的制备过程为：用包被缓冲液将包被原稀释成20yg/mL，每孔加 入100y1，25°C避光孵育2h或4°C过夜，倾去孔中液体，用洗涤液洗涤2次，每次30s，拍干， 然后在每孔中加入150~200y1封闭液，25°C避光孵育1~2h，倾去孔内液体拍干，干燥后 用铝膜真空密封保存。
[0016] 本发明的检测原理为：
[0017] 本试剂盒采用直接竞争ELISA方法，在酶标板微孔条上预包被偶联抗原，样本中 残留的金刚烷胺和酶标板微孔条上预包被的偶联抗原竞争抗金刚烷胺的酶标抗体，用TMB 底物显色，样本吸光度值与其所含残留物金刚烷胺的含量成负相关，与标准曲线比较，再乘 以其对应的稀释倍数，即可得出样本中金刚烷胺的残留量。
[0018] 本发明还提供了一种应用上述酶联免疫试剂盒检测金刚烷胺的方法，它包括步 骤：
[0019] (1)样品前处理；
[0020] (2)用试剂盒进行检测；
[0021] (3)分析检测结果。
[0022] 本发明检测金刚烷胺的酶联免疫试剂盒主要采用ELISA方法定性或定量检测样 品中金刚烷胺的含量；对样品的前处理要求低，样品前处理过程简单，能同时快速检测大批 量样品；主要试剂以工作液的形式提供，检验方法方便易行，具有特异性高、灵敏度高、精确 度高、准确度高等特点。本发明的酶联免疫试剂盒，结构简单、使用方便、价格便宜、携带便 利、检测方法高效、准确、简便、适于大批量样品筛选的定性、定量。
【附图说明】
[0023] 图1 :金刚烷胺半抗原合成路线图
[0024] 图2 :金刚烷胺半抗原核磁共振氢谱图
[0025] 图3 :试剂盒标准曲线图
【具体实施方式】
[0026] 下面结合具体的实施例来进一步阐述本发明。应理解，这些实施例仅用于说明本 发明，而不用来限制本发明的范围。
[0027] 实施例1试剂盒组分的制备
[0028] 1、金刚烷胺半抗原的制备
[0029] 取0. 8g盐酸金刚烷胺，加乙腈40ml，搅拌溶解，加无水碳酸钾0. 41g，搅拌，加 0 _氯丙酸〇. 54g，80度搅拌反应6h。停止反应，过滤，除去碳酸钾，蒸干，上硅胶柱，石油醚： 乙酸乙酯=1:1洗脱，分离纯化，得到半抗原产物0. 43g。
[0030] 取上述产物经核磁共振氢谱测定，如图2所示，化学位移S11. 〇的信号峰表明存 在羧基氢，2. 82、2. 49的信号峰表明存在间隔臂上的氢，因此证明半抗原合成成功。
[0031] 2、抗原的制备
[0032] 免疫原制备一一金刚烷胺半抗原与牛血清白蛋白（BSA)偶联得到免疫原。
[0033] 取12mg半抗原，溶解于lmLDMF中，得到溶液（1);取30mgEDC和NHS用0? 2ml水 充分溶解后于加入（1)中，室温下搅拌24h，即可得到反应液A。称取BSA50mg，使之充分溶 解在3. 8mLPBS(PH7. 2)中，将反应液A逐滴缓慢滴加到蛋白溶液中，并于室温下搅拌24h， 用0.Olmol/LPBS4°C透析3d每天换3次透析液。分装，于-20°C保存备用。
[0034] 包被原制备--金刚烷胺半抗原与卵清蛋白（0VA)偶联得到免疫原。
[0035] 取12mg半抗原，溶解于lmLDMF中，得到溶液（1);取30mgEDC和NHS用0? 2ml水 充分溶解后于加入（1)中，室温下搅拌24h，即可得到反应液A。称取0VA50mg，使之充分溶 解在3. 8mLPBS(PH7. 2)中，将反应液A逐滴缓慢滴加到蛋白溶液中，并于室温下搅拌24h， 用0.Olmol/LPBS4°C透析3d每天换3次透析液。分装，于-20°C保存备用。
[0036] 3、金刚烷胺单克隆抗体的制备
[0037] 动物免疫：将上述步骤得到的免疫原注入到Balb/c小鼠体内，免疫剂量为 150yg/只，使其产生抗血清。
[0038] 细胞融合和克隆化：小鼠血清测定结果较高后，取其脾细胞，按8:1(数量配比）比 例与SP2/0骨髓瘤细胞融合，采用间接竞争ELISA测定细胞上清液，筛选阳性孔。利用有限 稀释法对阳性孔进行克隆化，直到得到分泌金刚烷胺单克隆抗体的杂交瘤细胞株。
[0039] 细胞冻存和复苏：将单克隆杂交瘤细胞株用冻存液制成IX106个/mL的细胞悬 液，在液氮中长期保存。复苏时取出冻存管，立即放入37°C水浴中速融，离心去除冻存液后， 移入培养瓶内培养。
[0040] 单克隆抗体的生产与纯化：将Balb/c小鼠腹腔注入灭菌石蜡油0. 5mL/只，7天后 腹腔注射稳定的单克隆杂交瘤细胞株5X105个/只，7天后采集腹水。用辛酸-饱和硫酸 按法进彳丁腹水纯化， _20°C保存。
[0041] 4、酶标抗体的制备
[0042] 将金刚烷胺抗体与辣根过氧化物酶（HRP)进行偶联得到。
[0043] 5、 酶标板的制备
[0044] 用包被缓冲液将包被原稀释成20yg/mL，每孔加入100y1，25°C避光孵育2h，倾 去孔中液体，用洗涤液洗涤2次，每次30s，拍干，然后在每孔中加入200y1封闭液，25°C避 光孵育2h，倾去孔内液体拍干，干燥后用铝膜真空密封保存。
[0045] 实施例2检测金刚烷胺的酶联免疫试剂盒的组建
[0046] 组建检测金刚烷胺的酶联免疫试剂盒，使其包含下述组分：
[0047] (1)包被金刚烷胺偶联抗原的酶标板；
[0048] (2)金刚烷胺标准品溶液6瓶，浓度分别为0yg/L、0. 5yg/L、1. 5yg/L、4. 5yg/ L、13. 5yg/L、40. 5yg/L;
[0049] (3)用辣根过氧化物酶标记的金刚烷胺抗体；
[0050] (4)底物显色液由A液和B液组成，A液为过氧化脲，B液为四甲基联苯胺；
[0051] ⑶终止液为2mol/L硫酸；
[0052] (6)洗涤液为pH值为7. 4,含有0? 5 %~1. 0 %吐温_20、0. 01%。~0? 03%。叠氮化 钠防腐剂、〇. 1~〇. 3mol/L的磷酸盐缓冲液，所述百分比为重量体积百分比；
[0053] (7)复溶液为pH值为7. 0、0? 02mol/L的磷酸盐缓冲液，所述百分比为重量体积百 分比。
[0054] 实施例3动物组织中金刚烷胺的检测
[0055] 1、样品前处理
[0056] 用均质器均质组织样本；称取2. 0±0. 05g均质后的样本至10ml聚苯乙稀离心管 中，加入6ml乙腈，再加入0? 5g氯化钠，用振荡器振荡5min，3000g室温（20-25°C/68-77°F) 离心5min;移取3ml上层有机相至10ml洁净干燥玻璃管中，于40_50°C(68-86°F)水浴 氮气流下吹干；加入lml正己烷，用涡旋仪涡动lmin，再加入0. 5ml复溶工作液，用涡旋仪 涡动30s，混匀，3000g室温（20-25°C/68-77°F)离心3min;除去上层有机相，取下层水相 100y1用于分析。
[0057] 2、用试剂盒检测
[0058] 加入标准品/样本100y1到对应的微孔中，然后加入酶结合物工作液50y1/孔， 轻轻振荡混匀，用盖板膜盖板后置25°C(77°F)避光环境中反应30min。小心揭开盖板膜， 将孔内液体甩干，加入洗涤工作液250y1/孔，充分洗涤4-5次，每次间隔10s，泼掉板孔内 洗涤液，用吸水纸拍干（拍干后未被清除的气泡可用未使用过的枪头戳破）。加入底物液A 液50y1/孔，再加入底物液B液50y1/孔，轻轻振荡混匀，用盖板膜盖板后置25°C(77°F) 避光环境中反应15min。加入终止液50y1/孔，轻轻振荡混匀，设定酶标仪于450nm处（建 议用双波长450/630nm检测，请在5min内读完数据），测定每孔0D值。
[0059] 3、检测结果分析
[0060] 标准品或样本的百分吸光率等于标准品或样本的吸光度值的平均值（双孔）除以 第一个标准品（〇标准）的吸光度值的平均值，再乘以1〇〇%，得到标准品或样本的百分吸光 度值。以标准品百分吸光率为纵坐标，以金刚烷胺标准品浓度（yg/L)的对数为横坐标，绘 制标准曲线图。将样本的百分吸光率代入标准曲线中，从标准曲线上读出样本所对应的浓 度，乘以其对应的稀释倍数即为样本中金刚烷胺的实际浓度。
[0061] 实施例4金刚烷胺技术参数的确定试验
[0062] 1、试剂盒灵敏度和检测限
[0063] 按照常规方法测定试剂盒灵敏度，标准曲线的范围为0. 5~40. 5yg/L，IC5Q(50% 抑制浓度）浮动范围为2~4yg/L;对20份样品进行检测，从标准曲线上查出对应于各百 分吸光度值的浓度，以20份样本浓度的平均值加上3倍标准差表示检测限，结果显示，该方 法对动物组织的检测限均为0. 25yg/kg。
[0064] 2、样本精密度和准确度试验
[0065] 以回收率作为准确度评价指标，重复测定某一浓度样品的检测结果相对标准偏差 (RSD% )作为精密度评价指标。计算公式为：回收率（％ )=实际测定值/理论值X100%， 其中理论值为样品的添加浓度；相对标准偏差RSD%=SD/XX100%，其中SD为标准偏差， X为测定数据的平均值。
[0066] 按0. 5yg/kg、1. 0yg/kg两个浓度的金刚烷胺分别对鸡肉、鸭肉样品进行添加回 收测定，每个样品做4个平行，用三批不同试剂进行测定，计算样品的平均回收率及精密度 结果见下表。
[0067] 表1鸡肉样本精密度及准确度试验
[0069] 表2鸭肉样本精密度及准确度试验
[0071] 以0. 5yg/kg、l. 0yg/kg两个浓度的金刚烷胺分别对鸡肉、鸭肉进行添加，平均 回收率在82. 5%~91.0%之间；批内、批间相对标准偏差均小于10%。
[0072] 3、试剂盒稳定性试验
[0073] 试剂盒保存条件为2~8°C，经过12个月的测定，试剂盒的最大吸光度值（零标 准）、50%抑制浓度、金刚烷胺添加实际测定值均在正常范围之内。考虑在运输和使用过 程中，会有非正常保存条件出现，将试剂盒在37°C保存条件下放置7天，进行加速老化实 验，结果表明该试剂盒各项指标完全符合要求。考虑到试剂盒冷冻情况发生，将试剂盒放 入-20°C冰箱冷冻7天，测定结果也表明试剂盒各项指标完全正常。从以上结果可得出试剂 盒可以在2~8°C至少保存12个月以上。
【主权项】
1. 一种检测金刚烷胺的酶联免疫试剂盒，其特征在于包括：包被有包被原的酶标板、 金刚烷胺标准品溶液、酶标抗体、底物显色液、终止液、洗涤液、复溶液，所述包被原为金刚 烷胺偶联抗原，所述酶标抗体为酶标记的金刚烷胺抗体。2. 如权利要求1所述的试剂盒，其特征在于所述金刚烷胺偶联抗原是由金刚烷胺半 抗原与载体蛋白偶联得到，所述金刚烷胺半抗原是由金刚烷胺和β-氯丙酸反应得到，所 述载体蛋白可为鼠血清蛋白、甲状腺蛋白、牛血清白蛋白、兔血清蛋白、人血清蛋白、卵清蛋 白、血蓝蛋白或纤维蛋白原。3. 如权利要求2所述的试剂盒，其特征在于所述金刚烷胺半抗原是由金刚烷胺和 β -氯丙酸反应得到，分子结构式为：4. 如权利要求1所述的试剂盒，其特征在于所述金刚烷胺特异性抗体是以金刚烷胺偶 联抗原作为免疫原制备获得，所述金刚烷胺特异性抗体可为金刚烷胺单克隆抗体或金刚烷 胺多克隆抗体。5. 如权利要求1所述的试剂盒，其特征在于所述酶标记物的标记酶为辣根过氧化物酶 或细菌提取碱性磷酸酯酶，当标记酶为辣根过氧化物酶时，底物显色液A液为过氧化氢或 过氧化脲，底物显色液B液为邻苯二胺或四甲基联苯胺，终止液为1~2mol/L的硫酸或盐 酸缓冲液；当标记酶为细菌提取碱性磷酸酯酶时，底物显色液为对硝基磷酸盐缓冲液，终止 液为1~2mol/L氢氧化钠。6. 如权利要求1所述的试剂盒，其特征在于所述洗涤液为pH值为7. 4,含有0. 5 %~ 1. 0%吐温-20、0. 01%。~0. 03%。叠氮化钠防腐剂、0. 1~0. 3mol/L的磷酸盐缓冲液；所述 复溶液为pH值为7. 0、0. 02mol/L的磷酸盐缓冲液，所述百分比为重量体积百分比。7. 如权利要求1所述的试剂盒，其特征在于所述金刚烷胺标准品溶液的浓度分别为 0 μ g/L、0. 5 μ g/L、1. 5 μ g/L、4. 5 μ g/L、13. 5 μ g/L、40. 5 μ g/L。8. -种检测样品中金刚烷胺含量的方法，包括步骤： (1) 样品前处理； (2) 用权利要求1~7任一项所述的试剂盒进行检测； (3) 分析检测结果。
【专利摘要】本发明提供了一种检测金刚烷胺的酶联免疫试剂盒，它包括：包被有包被原的酶标板、金刚烷胺标准品溶液、酶标抗体、底物显色液、终止液、洗涤液、复溶液，所述包被原为金刚烷胺偶联抗原，所述酶标抗体为酶标记的金刚烷胺抗体。本发明还公开了一种应用上述酶联免疫试剂盒检测金刚烷胺的方法，它包括：首先进行样品前处理，然后用试剂盒进行检测，最后分析检测结果。本发明提供的酶联免疫试剂盒可用于检测动物组织样本中金刚烷胺的含量，其操作简便、费用低廉、灵敏度高、能够现场监控且适合大量样本的筛查。
【IPC分类】G01N33/12, G01N33/577
【公开号】CN104897864
【申请号】CN201510342064
【发明人】万宇平, 朱亮亮, 李行, 贾芳芳, 杨昌松, 何方洋, 王琳琛, 张瑜
【申请人】北京勤邦生物技术有限公司
【公开日】2015年9月9日
【申请日】2015年6月18日
【技术领域】
[0001] 本发明涉及酶联免疫检测技术，具体涉及一种用于检测金刚烷胺的酶联免疫试剂 盒，可定性、定量检测动物组织中金刚烷胺药物的残留量。
【背景技术】
[0002] 金刚烷胺属于抑制流感病毒的抗病毒类药物，常用于禽类抵抗禽流感，因而受到 广大养殖户的青睐，目前美国已经确定其对于抗帕金森病药物的有效性是不确定的，因缺 乏安全性和有效性的数据，金刚烷胺在美国不再被推荐用作治疗流感，且对神经系统，心血 管系统有一定的毒副作用，国内已经禁止做为兽药使用。
[0003] 目前，地方标准《DB21/2394-2014食品安全地方标准鸡肝和鸡肉中金刚烷胺、金 刚乙胺的检测超高效液相色谱串联质谱法》，《DB32/T1163-2007鸡肝中金刚烷胺残留量的 测定液相色谱-串联质谱法》均采用仪器方法，仪器方法具有灵敏度高、结果准确等优点，但 是资金和人员等投入成本较高。本发明应用酶联免疫法，测定动物组织中金刚烷胺药物的 残留量，具有检测限低、特异性强、操作简便、检测速度快、检测成本低，非常容易推广等优 点。
【发明内容】
[0004] 本发明的目的在于提供一种能够检测动物组织中金刚烷胺药物残留量的酶联免 疫试剂盒，并提供一种高效、准确、简便、适于大批量样品筛选的定性、定量检测方法。
[0005] 本发明试剂盒，它包括：包被有包被原的酶标板、金刚烷胺标准品溶液、酶标抗体、 底物显色液、终止液、洗涤液、复溶液，所述包被原为金刚烷胺偶联抗原，所述酶标抗体为酶 标记的金刚烷胺抗体。
[0006] 所述金刚烷胺偶联抗原是由金刚烷胺半抗原与载体蛋白偶联得到，所述金刚烷胺 半抗原是由金刚烷胺和氯丙酸反应得到，所述载体蛋白可为鼠血清蛋白、甲状腺蛋白、 牛血清白蛋白、兔血清蛋白、人血清蛋白、卵清蛋白、血蓝蛋白或纤维蛋白原。
[0007] 所述金刚烷胺特异性抗体是以金刚烷胺偶联抗原作为免疫原制备获得，所述金刚 烷胺特异性抗体可为金刚烷胺单克隆抗体或金刚烷胺多克隆抗体，其中优选金刚烷胺单克 隆抗体。
[0008] 所述酶标抗体的标记酶为辣根过氧化物酶或细菌提取碱性磷酸酯酶，其中优选辣 根过氧化物酶；酶标抗体是由酶和金刚烷胺抗体偶联得到的。
[0009] 为了更方便现场监控和大量样本筛查，所述试剂盒还包括金刚烷胺标准品溶液、 底物显色液、终止液、洗绦液、复溶液。
[0010] 所述金刚烷胺标准品溶液6瓶，浓度分别为0yg/L、0. 5yg/L、1. 5yg/L、4. 5yg/ L、13. 5yg/L、40. 5yg/L。
[0011] 当标记酶为辣根过氧化物酶时，所述底物显色液由底物液A液和底物液B液组成， A为过氧化氢或过氧化脲，B液为邻苯二胺或四甲基联苯胺，所述终止液为1~2mol/L的硫 酸或液盐酸缓冲液；当标记酶为细菌提取碱性磷酸酯酶时，所述底物显色液为对硝基磷酸 盐缓冲液，所述终止液为1~2mol/L氢氧化钠溶液。
[0012] 所述洗涤液优选为pH值为7. 4,含有0. 5%~1. 0%吐温-20、0. 01%。~0. 03%。叠 氮化钠防腐剂、〇. 1~〇. 3mol/L的磷酸盐缓冲液，所述百分比为重量体积百分比。
[0013] 所述复溶液优选为pH值为7. 0、0. 02mol/L的磷酸盐缓冲液，所述百分比为重量体 积百分比。
[0014] 其中在酶标板制备过程中所用到的包被缓冲液为pH值为9. 6,0. 05mol/L的碳酸 盐缓冲液，封闭液为pH值为7. 1~7. 5,含有1 %~3%酪蛋白、0. 1~0. 3mol/L的磷酸盐 缓冲液，所述百分比为重量体积百分比。
[0015] 本发明中酶标板的制备过程为：用包被缓冲液将包被原稀释成20yg/mL，每孔加 入100y1，25°C避光孵育2h或4°C过夜，倾去孔中液体，用洗涤液洗涤2次，每次30s，拍干， 然后在每孔中加入150~200y1封闭液，25°C避光孵育1~2h，倾去孔内液体拍干，干燥后 用铝膜真空密封保存。
[0016] 本发明的检测原理为：
[0017] 本试剂盒采用直接竞争ELISA方法，在酶标板微孔条上预包被偶联抗原，样本中 残留的金刚烷胺和酶标板微孔条上预包被的偶联抗原竞争抗金刚烷胺的酶标抗体，用TMB 底物显色，样本吸光度值与其所含残留物金刚烷胺的含量成负相关，与标准曲线比较，再乘 以其对应的稀释倍数，即可得出样本中金刚烷胺的残留量。
[0018] 本发明还提供了一种应用上述酶联免疫试剂盒检测金刚烷胺的方法，它包括步 骤：
[0019] (1)样品前处理；
[0020] (2)用试剂盒进行检测；
[0021] (3)分析检测结果。
[0022] 本发明检测金刚烷胺的酶联免疫试剂盒主要采用ELISA方法定性或定量检测样 品中金刚烷胺的含量；对样品的前处理要求低，样品前处理过程简单，能同时快速检测大批 量样品；主要试剂以工作液的形式提供，检验方法方便易行，具有特异性高、灵敏度高、精确 度高、准确度高等特点。本发明的酶联免疫试剂盒，结构简单、使用方便、价格便宜、携带便 利、检测方法高效、准确、简便、适于大批量样品筛选的定性、定量。
【附图说明】
[0023] 图1 :金刚烷胺半抗原合成路线图
[0024] 图2 :金刚烷胺半抗原核磁共振氢谱图
[0025] 图3 :试剂盒标准曲线图
【具体实施方式】
[0026] 下面结合具体的实施例来进一步阐述本发明。应理解，这些实施例仅用于说明本 发明，而不用来限制本发明的范围。
[0027] 实施例1试剂盒组分的制备
[0028] 1、金刚烷胺半抗原的制备
[0029] 取0. 8g盐酸金刚烷胺，加乙腈40ml，搅拌溶解，加无水碳酸钾0. 41g，搅拌，加 0 _氯丙酸〇. 54g，80度搅拌反应6h。停止反应，过滤，除去碳酸钾，蒸干，上硅胶柱，石油醚： 乙酸乙酯=1:1洗脱，分离纯化，得到半抗原产物0. 43g。
[0030] 取上述产物经核磁共振氢谱测定，如图2所示，化学位移S11. 〇的信号峰表明存 在羧基氢，2. 82、2. 49的信号峰表明存在间隔臂上的氢，因此证明半抗原合成成功。
[0031] 2、抗原的制备
[0032] 免疫原制备一一金刚烷胺半抗原与牛血清白蛋白（BSA)偶联得到免疫原。
[0033] 取12mg半抗原，溶解于lmLDMF中，得到溶液（1);取30mgEDC和NHS用0? 2ml水 充分溶解后于加入（1)中，室温下搅拌24h，即可得到反应液A。称取BSA50mg，使之充分溶 解在3. 8mLPBS(PH7. 2)中，将反应液A逐滴缓慢滴加到蛋白溶液中，并于室温下搅拌24h， 用0.Olmol/LPBS4°C透析3d每天换3次透析液。分装，于-20°C保存备用。
[0034] 包被原制备--金刚烷胺半抗原与卵清蛋白（0VA)偶联得到免疫原。
[0035] 取12mg半抗原，溶解于lmLDMF中，得到溶液（1);取30mgEDC和NHS用0? 2ml水 充分溶解后于加入（1)中，室温下搅拌24h，即可得到反应液A。称取0VA50mg，使之充分溶 解在3. 8mLPBS(PH7. 2)中，将反应液A逐滴缓慢滴加到蛋白溶液中，并于室温下搅拌24h， 用0.Olmol/LPBS4°C透析3d每天换3次透析液。分装，于-20°C保存备用。
[0036] 3、金刚烷胺单克隆抗体的制备
[0037] 动物免疫：将上述步骤得到的免疫原注入到Balb/c小鼠体内，免疫剂量为 150yg/只，使其产生抗血清。
[0038] 细胞融合和克隆化：小鼠血清测定结果较高后，取其脾细胞，按8:1(数量配比）比 例与SP2/0骨髓瘤细胞融合，采用间接竞争ELISA测定细胞上清液，筛选阳性孔。利用有限 稀释法对阳性孔进行克隆化，直到得到分泌金刚烷胺单克隆抗体的杂交瘤细胞株。
[0039] 细胞冻存和复苏：将单克隆杂交瘤细胞株用冻存液制成IX106个/mL的细胞悬 液，在液氮中长期保存。复苏时取出冻存管，立即放入37°C水浴中速融，离心去除冻存液后， 移入培养瓶内培养。
[0040] 单克隆抗体的生产与纯化：将Balb/c小鼠腹腔注入灭菌石蜡油0. 5mL/只，7天后 腹腔注射稳定的单克隆杂交瘤细胞株5X105个/只，7天后采集腹水。用辛酸-饱和硫酸 按法进彳丁腹水纯化， _20°C保存。
[0041] 4、酶标抗体的制备
[0042] 将金刚烷胺抗体与辣根过氧化物酶（HRP)进行偶联得到。
[0043] 5、 酶标板的制备
[0044] 用包被缓冲液将包被原稀释成20yg/mL，每孔加入100y1，25°C避光孵育2h，倾 去孔中液体，用洗涤液洗涤2次，每次30s，拍干，然后在每孔中加入200y1封闭液，25°C避 光孵育2h，倾去孔内液体拍干，干燥后用铝膜真空密封保存。
[0045] 实施例2检测金刚烷胺的酶联免疫试剂盒的组建
[0046] 组建检测金刚烷胺的酶联免疫试剂盒，使其包含下述组分：
[0047] (1)包被金刚烷胺偶联抗原的酶标板；
[0048] (2)金刚烷胺标准品溶液6瓶，浓度分别为0yg/L、0. 5yg/L、1. 5yg/L、4. 5yg/ L、13. 5yg/L、40. 5yg/L;
[0049] (3)用辣根过氧化物酶标记的金刚烷胺抗体；
[0050] (4)底物显色液由A液和B液组成，A液为过氧化脲，B液为四甲基联苯胺；
[0051] ⑶终止液为2mol/L硫酸；
[0052] (6)洗涤液为pH值为7. 4,含有0? 5 %~1. 0 %吐温_20、0. 01%。~0? 03%。叠氮化 钠防腐剂、〇. 1~〇. 3mol/L的磷酸盐缓冲液，所述百分比为重量体积百分比；
[0053] (7)复溶液为pH值为7. 0、0? 02mol/L的磷酸盐缓冲液，所述百分比为重量体积百 分比。
[0054] 实施例3动物组织中金刚烷胺的检测
[0055] 1、样品前处理
[0056] 用均质器均质组织样本；称取2. 0±0. 05g均质后的样本至10ml聚苯乙稀离心管 中，加入6ml乙腈，再加入0? 5g氯化钠，用振荡器振荡5min，3000g室温（20-25°C/68-77°F) 离心5min;移取3ml上层有机相至10ml洁净干燥玻璃管中，于40_50°C(68-86°F)水浴 氮气流下吹干；加入lml正己烷，用涡旋仪涡动lmin，再加入0. 5ml复溶工作液，用涡旋仪 涡动30s，混匀，3000g室温（20-25°C/68-77°F)离心3min;除去上层有机相，取下层水相 100y1用于分析。
[0057] 2、用试剂盒检测
[0058] 加入标准品/样本100y1到对应的微孔中，然后加入酶结合物工作液50y1/孔， 轻轻振荡混匀，用盖板膜盖板后置25°C(77°F)避光环境中反应30min。小心揭开盖板膜， 将孔内液体甩干，加入洗涤工作液250y1/孔，充分洗涤4-5次，每次间隔10s，泼掉板孔内 洗涤液，用吸水纸拍干（拍干后未被清除的气泡可用未使用过的枪头戳破）。加入底物液A 液50y1/孔，再加入底物液B液50y1/孔，轻轻振荡混匀，用盖板膜盖板后置25°C(77°F) 避光环境中反应15min。加入终止液50y1/孔，轻轻振荡混匀，设定酶标仪于450nm处（建 议用双波长450/630nm检测，请在5min内读完数据），测定每孔0D值。
[0059] 3、检测结果分析
[0060] 标准品或样本的百分吸光率等于标准品或样本的吸光度值的平均值（双孔）除以 第一个标准品（〇标准）的吸光度值的平均值，再乘以1〇〇%，得到标准品或样本的百分吸光 度值。以标准品百分吸光率为纵坐标，以金刚烷胺标准品浓度（yg/L)的对数为横坐标，绘 制标准曲线图。将样本的百分吸光率代入标准曲线中，从标准曲线上读出样本所对应的浓 度，乘以其对应的稀释倍数即为样本中金刚烷胺的实际浓度。
[0061] 实施例4金刚烷胺技术参数的确定试验
[0062] 1、试剂盒灵敏度和检测限
[0063] 按照常规方法测定试剂盒灵敏度，标准曲线的范围为0. 5~40. 5yg/L，IC5Q(50% 抑制浓度）浮动范围为2~4yg/L;对20份样品进行检测，从标准曲线上查出对应于各百 分吸光度值的浓度，以20份样本浓度的平均值加上3倍标准差表示检测限，结果显示，该方 法对动物组织的检测限均为0. 25yg/kg。
[0064] 2、样本精密度和准确度试验
[0065] 以回收率作为准确度评价指标，重复测定某一浓度样品的检测结果相对标准偏差 (RSD% )作为精密度评价指标。计算公式为：回收率（％ )=实际测定值/理论值X100%， 其中理论值为样品的添加浓度；相对标准偏差RSD%=SD/XX100%，其中SD为标准偏差， X为测定数据的平均值。
[0066] 按0. 5yg/kg、1. 0yg/kg两个浓度的金刚烷胺分别对鸡肉、鸭肉样品进行添加回 收测定，每个样品做4个平行，用三批不同试剂进行测定，计算样品的平均回收率及精密度 结果见下表。
[0067] 表1鸡肉样本精密度及准确度试验
[0069] 表2鸭肉样本精密度及准确度试验
[0071] 以0. 5yg/kg、l. 0yg/kg两个浓度的金刚烷胺分别对鸡肉、鸭肉进行添加，平均 回收率在82. 5%~91.0%之间；批内、批间相对标准偏差均小于10%。
[0072] 3、试剂盒稳定性试验
[0073] 试剂盒保存条件为2~8°C，经过12个月的测定，试剂盒的最大吸光度值（零标 准）、50%抑制浓度、金刚烷胺添加实际测定值均在正常范围之内。考虑在运输和使用过 程中，会有非正常保存条件出现，将试剂盒在37°C保存条件下放置7天，进行加速老化实 验，结果表明该试剂盒各项指标完全符合要求。考虑到试剂盒冷冻情况发生，将试剂盒放 入-20°C冰箱冷冻7天，测定结果也表明试剂盒各项指标完全正常。从以上结果可得出试剂 盒可以在2~8°C至少保存12个月以上。
【主权项】
1. 一种检测金刚烷胺的酶联免疫试剂盒，其特征在于包括：包被有包被原的酶标板、 金刚烷胺标准品溶液、酶标抗体、底物显色液、终止液、洗涤液、复溶液，所述包被原为金刚 烷胺偶联抗原，所述酶标抗体为酶标记的金刚烷胺抗体。2. 如权利要求1所述的试剂盒，其特征在于所述金刚烷胺偶联抗原是由金刚烷胺半 抗原与载体蛋白偶联得到，所述金刚烷胺半抗原是由金刚烷胺和β-氯丙酸反应得到，所 述载体蛋白可为鼠血清蛋白、甲状腺蛋白、牛血清白蛋白、兔血清蛋白、人血清蛋白、卵清蛋 白、血蓝蛋白或纤维蛋白原。3. 如权利要求2所述的试剂盒，其特征在于所述金刚烷胺半抗原是由金刚烷胺和 β -氯丙酸反应得到，分子结构式为：4. 如权利要求1所述的试剂盒，其特征在于所述金刚烷胺特异性抗体是以金刚烷胺偶 联抗原作为免疫原制备获得，所述金刚烷胺特异性抗体可为金刚烷胺单克隆抗体或金刚烷 胺多克隆抗体。5. 如权利要求1所述的试剂盒，其特征在于所述酶标记物的标记酶为辣根过氧化物酶 或细菌提取碱性磷酸酯酶，当标记酶为辣根过氧化物酶时，底物显色液A液为过氧化氢或 过氧化脲，底物显色液B液为邻苯二胺或四甲基联苯胺，终止液为1~2mol/L的硫酸或盐 酸缓冲液；当标记酶为细菌提取碱性磷酸酯酶时，底物显色液为对硝基磷酸盐缓冲液，终止 液为1~2mol/L氢氧化钠。6. 如权利要求1所述的试剂盒，其特征在于所述洗涤液为pH值为7. 4,含有0. 5 %~ 1. 0%吐温-20、0. 01%。~0. 03%。叠氮化钠防腐剂、0. 1~0. 3mol/L的磷酸盐缓冲液；所述 复溶液为pH值为7. 0、0. 02mol/L的磷酸盐缓冲液，所述百分比为重量体积百分比。7. 如权利要求1所述的试剂盒，其特征在于所述金刚烷胺标准品溶液的浓度分别为 0 μ g/L、0. 5 μ g/L、1. 5 μ g/L、4. 5 μ g/L、13. 5 μ g/L、40. 5 μ g/L。8. -种检测样品中金刚烷胺含量的方法，包括步骤： (1) 样品前处理； (2) 用权利要求1~7任一项所述的试剂盒进行检测； (3) 分析检测结果。
【专利摘要】本发明提供了一种检测金刚烷胺的酶联免疫试剂盒，它包括：包被有包被原的酶标板、金刚烷胺标准品溶液、酶标抗体、底物显色液、终止液、洗涤液、复溶液，所述包被原为金刚烷胺偶联抗原，所述酶标抗体为酶标记的金刚烷胺抗体。本发明还公开了一种应用上述酶联免疫试剂盒检测金刚烷胺的方法，它包括：首先进行样品前处理，然后用试剂盒进行检测，最后分析检测结果。本发明提供的酶联免疫试剂盒可用于检测动物组织样本中金刚烷胺的含量，其操作简便、费用低廉、灵敏度高、能够现场监控且适合大量样本的筛查。
【IPC分类】G01N33/12, G01N33/577
【公开号】CN104897864
【申请号】CN201510342064
【发明人】万宇平, 朱亮亮, 李行, 贾芳芳, 杨昌松, 何方洋, 王琳琛, 张瑜
【申请人】北京勤邦生物技术有限公司
【公开日】2015年9月9日
【申请日】2015年6月18日
最新回复(0)